Fabaceae — sistemática de las leguminosas
Bienvenidos a la lección introductoria del módulo «Sistemática de plantas agrícolas» dentro de la disciplina «Sistemática y taxonomía de organismos de la agroesfera». Hoy comenzamos un ciclo de lecciones dedicado a una de las familias de plantas con flores más importantes para la humanidad: Fabaceae, o Leguminosae, la familia de las leguminosas. En esta lección examinaremos las características generales de la familia, su lugar en el sistema de las plantas con flores, las relaciones filogenéticas, los géneros más importantes y su significado económico, así como la capacidad única de las leguminosas para la fijación simbiótica de nitrógeno. Discutiremos por qué la comprensión de la sistemática y la filogenia de las leguminosas es crítica para el fitomejoramiento, la agricultura sostenible y la conservación de la biodiversidad.
El material de la lección se basa en trabajos fundamentales sobre sistemática y filogenia de las leguminosas, en primer lugar en la monografía del Legume Phylogeny Working Group (LPWG, 2017), así como en manuales clásicos de sistemática vegetal (Judd et al., 2018; Sharma, 2009), fisiología vegetal (Lambers & Oliveira, 2019; Marschner, 2012), agronomía y horticultura (Nonnecke, 1989; Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008), ecología de sistemas agrícolas (Connor et al., 2011) y sistemática molecular (Hollingsworth et al., 1999).
1. Las leguminosas como tercera familia más grande de plantas con flores
1.1. Estatus taxonómico y volumen de la familia
La familia de las leguminosas (Fabaceae, o Leguminosae) ocupa el tercer lugar entre todas las familias de plantas con flores por número de especies, cediendo solo ante Asteraceae (compuestas) y Orchidaceae (orquídeas) (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). Según las estimaciones modernas, la familia incluye alrededor de 770 géneros y más de 19 500 especies (LPWG, 2017). Para comparación: la familia Poaceae (gramíneas) cuenta con unas 12 000 especies, y Rosaceae (rosáceas) con unas 3000 especies (Judd et al., 2018). Así, las leguminosas representan uno de los grupos más grandes y diversos de plantas terrestres.
El nombre de la familia — Fabaceae — proviene del género tipo Faba Mill. (= Vicia L.), aunque en la literatura también se usa ampliamente el nombre alternativo Leguminosae, que tiene prioridad en algunos sistemas de clasificación (Lewis & Schrire, 2003; LPWG, 2017). Ambos nombres son reconocidos por el Código Internacional de Nomenclatura para algas, hongos y plantas (Código de Melbourne) como intercambiables (McNeill et al., 2012; LPWG, 2017).
1.2. Distribución geográfica y amplitud ecológica
Las leguminosas son un grupo cosmopolita que se encuentra en todos los continentes excepto la Antártida, y en casi todos los biomas, desde las tundras árticas hasta las selvas tropicales, desde los desiertos hasta los humedales (Schrire et al., 2005a, b; LPWG, 2017). Son componentes ecológicos importantes de prácticamente todos los ecosistemas terrestres: dominan en bosques tropicales secos y sabanas, desempeñan un papel importante en comunidades mediterráneas, desérticas y templadas, y ascienden a altas latitudes y altitudes (LPWG, 2017).
La amplitud ecológica de las leguminosas es asombrosa. Entre ellas se encuentran:
- Grandes árboles emergentes tropicales con raíces tabulares (por ejemplo, algunas especies de Inga, Parkia);
- Arbustos y subarbustos de desiertos y sabanas (Acacia s.l., Prosopis);
- Anuales y perennes herbáceas de latitudes templadas (Pisum, Vicia, Trifolium, Medicago);
- Lianas y plantas trepadoras con o sin zarcillos (Lathyrus, Vigna, Mucuna);
- Epífitas y suculentas (algunos representantes tropicales);
- Plantas acuáticas (raramente, por ejemplo, Neptunia oleracea);
- Subarbustos geoxílicos con órganos subterráneos leñosos (LPWG, 2017).
Tal diversidad de formas de vida y estrategias ecológicas hace de las leguminosas uno de los grupos más exitosos de plantas con flores.
1.3. Importancia en la alimentación humana
Las leguminosas desempeñan un papel excepcional en la alimentación de la humanidad. Por importancia económica, la familia solo cede ante Poaceae (gramíneas) (LPWG, 2017). Los principales productos alimenticios obtenidos de las leguminosas se pueden dividir en varias categorías:
Cultivos de grano (pulses) — son leguminosas cultivadas por sus semillas secas. Son la fuente más importante de proteína vegetal: las semillas contienen del 20 al 25 % de proteína, además de carbohidratos, fibra, vitaminas y minerales (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008). Entre los cultivos de grano más importantes:
- Guisante (Pisum sativum) — uno de los cultivos más antiguos del Viejo Mundo, cultivado durante más de 7000 años (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Lenteja (Lens culinaris) — fuente importante de proteína en el Mediterráneo, Asia del Sur y Oriente Medio (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Garbanzo (Cicer arietinum) — segundo cultivo de grano más importante del mundo después de la soja, principal fuente de proteína en la India y países del sur de Asia (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Frijol común (Phaseolus vulgaris) — cultivo de origen americano, hoy distribuido por todo el mundo; incluye formas tanto de grano como hortícolas (vainas) (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Soja (Glycine max) — el cultivo oleaginoso y proteico más importante de origen esteasiático; las semillas contienen hasta un 50 % de proteína y hasta un 25 % de aceite (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Cacahuete (Arachis hypogaea) — cultivo de origen americano, cultivado por sus semillas ricas en proteína (alrededor del 30 %) y aceite (hasta el 50 %) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Vigna (Vigna spp.) — incluye mungo (V. radiata), urd (V. mungo), caupí (V. unguiculata) y otros cultivos importantes de los trópicos y subtrópicos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Guandú (Cajanus cajan) — cultivo importante de los trópicos secos, especialmente en la India y África Oriental (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Leguminosas hortícolas — son cultivos en los que se consumen vainas inmaduras, semillas inmaduras o brotes jóvenes. Entre ellas:
- Frijol de vaina (Phaseolus vulgaris) — vainas inmaduras consumidas frescas, congeladas o en conserva (Nonnecke, 1989; Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Guisante verde (Pisum sativum) — semillas inmaduras ampliamente usadas frescas y en conserva (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Guisante de azúcar (Pisum sativum var. macrocarpum) — vainas inmaduras consumidas enteras (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Haba (Vicia faba) — formas de semilla grande usadas como cultivo hortícola (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Frijol de Lima (Phaseolus lunatus) — cultivo de origen americano, usado tanto fresco como seco (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Vigna de vaina larga (Vigna unguiculata cultigroup sesquipedalis) — cultivo hortícola popular del sudeste asiático (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Otros productos alimenticios — de las leguminosas también se obtienen:
- Aceite de soja — uno de los aceites vegetales más importantes del mundo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Aceite de cacahuete — producto alimenticio obtenido de las semillas de cacahuete (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Salsa de soja, tofu, miso — productos de fermentación de la soja, tradicionales de Asia Oriental (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Brotes de mungo — producto popular en la cocina asiática (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Tamarindo (Tamarindus indica) — especia y producto alimenticio (LPWG, 2017);
- Algarroba (Ceratonia siliqua) — frutos usados como sucedáneo del chocolate y forraje para el ganado (LPWG, 2017).
El valor nutritivo de las leguminosas es excepcionalmente alto. Son ricas en proteína, fibra, vitaminas (especialmente del grupo B), minerales (hierro, calcio, magnesio, zinc) y contienen poca grasa (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008). Las proteínas de las leguminosas suelen ser limitantes en aminoácidos azufrados (metionina y cisteína), pero al combinarlas con cereales, ricos en estos aminoácidos pero pobres en lisina, se alcanza una composición aminoacídica completa (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Precisamente esta combinación — cereales + leguminosas — constituye la base de las dietas tradicionales de muchos pueblos del mundo.
1.4. Importancia en la alimentación animal
Las leguminosas desempeñan un papel clave en la producción de forrajes. Se utilizan como:
- Gramíneas forrajeras — alfalfa (Medicago sativa), trébol (Trifolium spp.), esparceta (Onobrychis spp.), veza (Vicia spp.), meliloto (Melilotus spp.) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; LPWG, 2017);
- Cultivos para ensilaje — maíz + soja, sorgo + caupí y otras mezclas (Connor et al., 2011);
- Forraje verde — masa verde fresca suministrada al ganado (Connor et al., 2011);
- Heno y henolaje — forrajes conservados de leguminosas herbáceas (Connor et al., 2011);
- Piensos concentrados — semillas de soja, guisante, altramuz, usadas en la industria de piensos compuestos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Los forrajes de leguminosas se caracterizan por un alto contenido de proteína (15–25 % en materia seca), buena digestibilidad y valor nutritivo (Connor et al., 2011). La alfalfa, el trébol y otras leguminosas herbáceas son la base de la producción de pastos y henos en muchas regiones del mundo. Por ejemplo, en Europa y Norteamérica, la alfalfa y el trébol ocupan millones de hectáreas y proporcionan forraje de alta calidad para la ganadería de leche y carne (Connor et al., 2011).
1.5. Papel en la rotación de cultivos y en la acumulación de nitrógeno en el suelo
Una de las características más importantes de las leguminosas es su capacidad para la fijación simbiótica de nitrógeno, proceso mediante el cual el nitrógeno molecular atmosférico (N2) se transforma en formas disponibles para las plantas (amoníaco, aminoácidos) con ayuda de bacterias rizobios que viven en nódulos en las raíces (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Este proceso hace que las leguminosas sean únicas entre los cultivos agrícolas, ya que no solo satisfacen sus necesidades de nitrógeno, sino que también enriquecen el suelo con nitrógeno disponible para los cultivos posteriores.
La contribución de las leguminosas al balance de nitrógeno de los agrocenosis es enorme. Según las estimaciones, la fijación biológica de nitrógeno aporta entre 40 y 70 millones de toneladas de nitrógeno al año a escala global (Herridge et al., 2008; Marschner, 2012). La fijación simbiótica por leguminosas constituye alrededor del 50 % de esa cantidad. Dependiendo de la especie, las condiciones de cultivo y la eficacia de los rizobios, las leguminosas pueden fijar de 25 a 250 kg de nitrógeno por hectárea por temporada, y en condiciones favorables hasta 500 kg N/ha al año (Marschner, 2012). Por ejemplo:
- Alfalfa (Medicago sativa) — 180–780 kg N/ha por temporada (Marschner, 2012);
- Trébol (Trifolium spp.) — 64–250 kg N/ha (Marschner, 2012);
- Soja (Glycine max) — 15–250 kg N/ha (Marschner, 2012);
- Guisante (Pisum sativum) — 86 kg N/ha (Marschner, 2012);
- Altramuz (Lupinus spp.) — 150–170 kg N/ha (Marschner, 2012).
La inclusión de leguminosas en las rotaciones de cultivos es uno de los principios fundamentales de la agricultura sostenible. Los antecesores leguminosos aumentan el rendimiento de los cultivos posteriores en un 30–35 % en comparación con el monocultivo de cereales (Khan et al., 2019). Por ejemplo, el maíz después de soja o alfalfa requiere 40–50 kg N/ha menos de fertilizante nitrogenado (Connor et al., 2011). Esto no solo reduce los costos de fertilizantes, sino que también disminuye la contaminación ambiental asociada con la producción y aplicación de fertilizantes nitrogenados (gases de efecto invernadero, lixiviación de nitratos a las aguas subterráneas, eutrofización de cuerpos de agua) (Connor et al., 2011; Marschner, 2012).
Las leguminosas también se utilizan como abonos verdes — plantas cultivadas específicamente para ser incorporadas al suelo con el fin de enriquecerlo con materia orgánica y nitrógeno (Connor et al., 2011). Los abonos verdes clásicos son el altramuz, la veza, el meliloto, el trébol y la serradela (Ornithopus sativus). El abonado verde mejora la estructura del suelo, aumenta el contenido de materia orgánica, suprime las malas hierbas y reduce la erosión (Connor et al., 2011).
1.6. Diversidad de formas de vida
Como ya se ha señalado, las leguminosas muestran una diversidad excepcional de formas de vida (LPWG, 2017; Judd et al., 2018):
Árboles. Muchas leguminosas tropicales son árboles grandes que forman el dosel del bosque. Por ejemplo, especies de Parkia, Inga, Dipteryx, Pterocarpus, Dalbergia alcanzan alturas de 30–40 m y más. Algunas leguminosas son emergentes que sobresalen por encima del dosel principal del bosque tropical. La madera de muchas leguminosas (por ejemplo, Dalbergia, Pterocarpus, Intsia) pertenece a la categoría de maderas valiosas y se utiliza para muebles, instrumentos musicales y parqué (LPWG, 2017).
Arbustos. Muchas leguminosas son arbustos que dominan en sabanas, maquis mediterráneos, desiertos y semidesiertos. Por ejemplo, especies de Acacia s.l., Prosopis, Calliandra, Senna forman matorrales en regiones áridas y semiáridas (LPWG, 2017).
Hierbas. Las leguminosas herbáceas son un componente importantísimo de praderas, estepas, praderas americanas y pastizales de latitudes templadas y subtropicales. Entre ellas se encuentran Trifolium, Medicago, Lotus, Vicia, Lathyrus, Astragalus (el género más grande de la familia — unas 2000 especies) (LPWG, 2017; Judd et al., 2018).
Lianas. Muchas leguminosas tropicales son lianas que trepan por los troncos de los árboles con zarcillos (por ejemplo, Lathyrus, Vicia) o se enrollan alrededor de un soporte (Mucuna, Vigna, Dolichos). Algunas lianas alcanzan longitudes de 50 m y más (LPWG, 2017).
Plantas acuáticas. Pocas leguminosas están adaptadas al medio acuático. Por ejemplo, Neptunia oleracea es una planta acuática flotante de los trópicos; Aeschynomene spp. pueden crecer en suelos encharcados (LPWG, 2017).
Suculentas y xerófitas. Algunas leguminosas están adaptadas a condiciones extremadamente secas. Por ejemplo, Prosopis spp. (mezquite) son arbustos y árboles de raíces profundas de los desiertos de Norteamérica y Oriente Medio; Acacia spp. de los desiertos australianos son arbustos xerófitos con filodios (LPWG, 2017).
Tal diversidad de formas de vida refleja la amplia plasticidad ecológica de la familia y su capacidad para adaptarse a las más variadas condiciones ambientales.
1.7. Importancia económica: visión general
Además de su importancia alimentaria y forrajera, las leguminosas son utilizadas por el ser humano para muchos otros fines (LPWG, 2017):
- Madera — Dalbergia (palo rosa, palisandro), Pterocarpus (padauk), Intsia (merbau), Acacia (acacia), Prosopis (mezquite) — maderas valiosas para muebles, construcción, instrumentos musicales;
- Taninos — Acacia spp. (acacia), Caesalpinia spp. — fuentes de taninos para la industria del cuero;
- Gomas y resinas — Acacia senegal (goma arábiga), Astragalus spp. (tragacanto), Hymenaea (copal) — usadas en las industrias alimentaria, farmacéutica y textil;
- Colorantes — Indigofera (índigo), Haematoxylum (palo de Campeche), Caesalpinia (brasilina) — fuentes de colorantes naturales;
- Plantas medicinales — Glycyrrhiza (regaliz), Astragalus (astrágalo), Sophora (sófora), Erythrina (eritrina), Piscidia (raíz de pescado) — fuentes de compuestos biológicamente activos;
- Plantas ornamentales — Robinia (robinia, acacia blanca), Wisteria (glicinia), Lupinus (altramuz), Delonix (flamboyán), Bauhinia (bauhinia), Acacia (acacia) — ampliamente cultivadas en jardines y parques;
- Insecticidas — Derris (derris), Lonchocarpus (lonchocarpus) — fuentes de rotenona;
- Sustancias curtientes — Acacia, Caesalpinia, Prosopis — fuentes de taninos;
- Aceites esenciales — Acacia (acacia), Dipteryx (tonka), Myroxylon (bálsamo del Perú) — usados en perfumería.
Así, las leguminosas no solo son los cultivos alimentarios y forrajeros más importantes, sino también fuentes de numerosos productos industriales, medicamentos y plantas ornamentales.
2. Características generales y posición filogenética
2.1. Lugar de Fabaceae en el sistema de las plantas con flores
La familia Fabaceae (Leguminosae) pertenece al orden Fabales, uno de los órdenes mejor delimitados en el sistema de las plantas con flores (Judd et al., 2018). El orden Fabales incluye cuatro familias: Fabaceae, Polygalaceae (poligaláceas), Surianaceae y Quillajaceae (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). La monofilia del orden Fabales está confirmada de manera fiable tanto por datos filogenéticos moleculares (análisis de secuencias de genes plastidiales y nucleares) como por sinapomorfias morfológicas: perforaciones simples de los vasos, pétalos unguiculados, embrión grande y verde (Judd et al., 2018; LPWG, 2017).
Las relaciones filogenéticas dentro del orden Fabales son las siguientes (Judd et al., 2018):
- Polygalaceae — grupo hermano del clado que une a las otras tres familias;
- Surianaceae y Quillajaceae — grupos hermanos sucesivos de Fabaceae;
- Fabaceae — la familia más grande y más especializada del orden, hermana del clado Surianaceae + Quillajaceae.
Así, los parientes más cercanos de las leguminosas entre las plantas con flores modernas son las pequeñas familias Surianaceae (arbustos y árboles de los trópicos y subtrópicos) y Quillajaceae (una familia con un solo género Quillaja, que crece en Sudamérica) (Judd et al., 2018). Juntas forman un clado bien apoyado dentro del orden Fabales.
El orden Fabales, a su vez, pertenece al clado fábido (Fabidae, eurosids I) dentro del grupo rósidas (Rosidae), que junto con las málvidas (Malvidae) forma el clado superrósidas (Superrosidae) dentro de las eudicotiledóneas (Eudicotyledoneae) (Judd et al., 2018; LPWG, 2017). Tal posición filogenética significa que las leguminosas están evolutivamente relacionadas con familias de gran importancia económica como Rosaceae (rosáceas), Fagaceae (fagáceas), Betulaceae (betuláceas), Cucurbitaceae (cucurbitáceas), así como con los órdenes Malpighiales, Sapindales y otros (Judd et al., 2018).
2.2. Monofilia de la familia Fabaceae
La monofilia de la familia Fabaceae (Leguminosae) no ofrece dudas y está confirmada tanto por datos moleculares como morfológicos (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). Entre las sinapomorfias morfológicas clave de la familia cabe mencionar (Judd et al., 2018; LPWG, 2017):
1. Gineceo de un solo carpelo (gineceo monocarpelar) con ovario súpero, un lóculo, placentación marginal y generalmente dos o muchos óvulos dispuestos en dos filas sobre una placenta. Esta es la característica más llamativa y universal de la familia; solo en casos raros (por ejemplo, en algunos representantes del género Inga) se observa un gineceo multicarpelar (LPWG, 2017).
2. Fruto — legumbre — fruto seco, generalmente dehiscente longitudinalmente por dos suturas, formado por un solo carpelo. La legumbre puede ser multiseminada o monoseminada, dehiscente o indehiscente, seca o carnosa, alada o no alada (Judd et al., 2018; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Precisamente este tipo de fruto dio nombre a toda la familia.
3. Flores generalmente bisexuales, con cáliz de 5 (raramente 4 o 6) sépalos, generalmente soldados, y corola de 5 (raramente 4 o 6) pétalos, generalmente libres o parcialmente soldados. Estambres generalmente 10, raramente 5, 4 o numerosos; a menudo se sueldan en un tubo (monadelfos) o en dos grupos (diadelfos) (Judd et al., 2018; LPWG, 2017).
4. Hojas generalmente compuestas, pinnadas, bipinnadas, trifoliadas o palmeadas, con pulvinos bien desarrollados en la base de la hoja y de los folíolos, con estípulas (Judd et al., 2018; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Los pulvinos proporcionan los llamados «movimientos de sueño» de las hojas y son un rasgo característico de muchas leguminosas.
5. Simbiosis con bacterias fijadoras de nitrógeno (rizobios) con formación de nódulos radiculares — aunque no es una característica universal (no todas las leguminosas forman nódulos), está ampliamente extendida y tiene una enorme importancia ecológica y agronómica (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Hablaremos de esto con más detalle en el capítulo 4.
6. Composición química específica: presencia frecuente de alcaloides, taninos, flavonoides, aminoácidos no proteicos (por ejemplo, canavanina), glucósidos cianogénicos; en muchas leguminosas se acumulan en las semillas proteínas de reserva — leghemoglobina y globulinas (legumina, vicilina) (Judd et al., 2018; LPWG, 2017).
Cabe subrayar que, a pesar de la enorme diversidad morfológica, todas las leguminosas están unidas por un plan común de estructura de la flor y del fruto, lo que hace que la familia sea fácilmente reconocible incluso para un no especialista.
2.3. División tradicional de la familia en tres subfamilias
Durante más de 140 años, desde el trabajo clásico de Bentham (1865) y hasta finales del siglo XX, la familia Fabaceae se dividía tradicionalmente en tres subfamilias (Polhill et al., 1981; Lewis et al., 2005; Sharma, 2009):
1. Faboideae (o Papilionoideae) — papilionoideas;
2. Mimosoideae — mimosoideas;
3. Caesalpinioideae — cesalpinioideas.
Esta división se basaba principalmente en caracteres florales, en primer lugar en el tipo de estivación (disposición) de los pétalos en el botón y en la simetría floral (LPWG, 2017; Judd et al., 2018):
- Faboideae (Papilionoideae) — flores generalmente zigomorfas, papilionáceas: el pétalo superior (adaxial) — el «estandarte» (vexillum, standard) — es el más grande y está dispuesto por fuera; dos pétalos laterales — las «alas» (alae, wings) — y dos pétalos inferiores, a menudo soldados en una «quilla» (carina, keel). Esta disposición se denomina estivación imbricada descendente (Judd et al., 2018).
- Mimosoideae — flores generalmente actinomorfas (radialmente simétricas), pequeñas, reunidas en inflorescencias densas capitadas o espiciformes; pétalos en el botón valvados — es decir, no se superponen por los bordes, sino que están cerrados por valvas (Judd et al., 2018; LPWG, 2017).
- Caesalpinioideae — flores generalmente zigomorfas, pero no papilionáceas; el pétalo superior (adaxial) suele ser el más interno (dispuesto dentro de los demás pétalos en el botón), y los demás pétalos se superponen entre sí en estivación imbricada ascendente (Judd et al., 2018).
Estas tres subfamilias se consideraban tradicionalmente grupos naturales, y su reconocimiento quedó fijado en las monografías clásicas sobre leguminosas (Polhill & Raven, 1981; Polhill, 1994; Lewis et al., 2005). Además, en algunos sistemas (por ejemplo, Hutchinson, 1964; Cronquist, 1981), estos tres grupos se trataban con el rango de familias separadas — Papilionaceae, Mimosaceae y Caesalpiniaceae, respectivamente (Judd et al., 2018; LPWG, 2017).
2.4. Filogenia moderna: parafilia de Caesalpinioideae y anidamiento de Mimosoideae
Sin embargo, a partir de la década de 1990, los estudios filogenéticos moleculares (análisis de secuencias de los genes rbcL, matK, trnL y otros marcadores plastidiales y nucleares) mostraron de manera inequívoca que la división tradicional en tres subfamilias no refleja la filogenia real de la familia (LPWG, 2017; Judd et al., 2018; Doyle et al., 1997; Bruneau et al., 2008; LPWG, 2013a).
Las conclusiones clave de estos estudios pueden formularse así:
1. Caesalpinioideae en el sentido tradicional es un grupo parafilético. Esto significa que el último ancestro común de todas las cesalpinioideas dio origen no solo a ellas, sino también a representantes de las otras dos subfamilias — Mimosoideae y Faboideae (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). En otras palabras, las «cesalpinioideas» no son un clado, sino un grado — un conjunto de linajes que se ramifican sucesivamente y que no forman un grupo monofilético único.
2. Mimosoideae es un grupo monofilético, pero está anidado dentro de Caesalpinioideae parafiléticas. Esto significa que los parientes más cercanos de las mimosoideas no son otras mimosoideas, sino ciertas cesalpinioideas (LPWG, 2017; Bruneau et al., 2008; Manzanilla & Bruneau, 2012). Los datos moleculares muestran que las mimosoideas se originaron a partir de ancestros pertenecientes al llamado clado MCC (Mimosoideae-Caesalpinieae-Cassieae), y sus parientes más cercanos son algunos géneros de cesalpinioideas, por ejemplo, Dimorphandra, Peltophorum, Caesalpinia y otros (Doyle, 2011, 2012; LPWG, 2017).
3. Faboideae (Papilionoideae) es un grupo monofilético, que, sin embargo, también está anidado dentro de Caesalpinioideae s.l. parafiléticas (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). Los grupos hermanos de Faboideae son algunas cesalpinioideas (por ejemplo, Dialium y géneros afines), no las mimosoideas.
4. Linajes basales de la familia. Los análisis filogenéticos muestran que los primeros en separarse del tronco común de las leguminosas son varios clados pequeños que tradicionalmente se asignaban a Caesalpinioideae: Cercis + Bauhinia (clado Cercideae), Detarieae (incluyendo Hymenaea, Brownea, Amherstia, Tamarindus y otros), Duparquetia (género monotípico) y Dialioideae (Dialium, Apuleia, Zenia y otros) (LPWG, 2017; Bruneau et al., 2008). Precisamente estos grupos, junto con Faboideae y las Caesalpinioideae redefinidas (que incluyen a las mimosoideas), constituyen las seis subfamilias de la nueva clasificación.
Así, la estructura filogenética de la familia Fabaceae puede representarse esquemáticamente de la siguiente manera (LPWG, 2017; Judd et al., 2018):
Fabaceae:
- Cercidoideae (Cercis, Bauhinia y afines)
- Detarioideae (Hymenaea, Brownea, Amherstia, Tamarindus, etc.)
- Duparquetioideae (Duparquetia orchidacea)
- Dialioideae (Dialium, Apuleia, Zenia, etc.)
- Clado que une: Caesalpinioideae (en el nuevo sentido, incluyendo Mimosoideae) y Faboideae (Papilionoideae).
Este esquema refleja la ramificación sucesiva de los clados basales y la existencia de un gran clado que une a las Caesalpinioideae redefinidas (con las mimosoideas) y a las Faboideae.
2.5. Nueva clasificación del LPWG (2017): seis subfamilias
En 2017, el Legume Phylogeny Working Group (LPWG) publicó una nueva clasificación de la familia Leguminosae, basada en el análisis filogenético más completo hasta la fecha, que incluye secuencias del gen matK para 3842 muestras que representan 3696 especies y 698 de los 765 géneros de la familia (LPWG, 2017). Esta clasificación reconoce seis subfamilias, cada una de las cuales es monofilética y está bien apoyada tanto por datos moleculares como morfológicos (LPWG, 2017; Judd et al., 2018).
Enumeremos estas seis subfamilias en orden de separación del tronco común (LPWG, 2017):
Cercidoideae Legume Phylogeny Working Group (stat. nov.)
Género tipo: Cercis L.
Número de géneros y especies: 12 géneros, alrededor de 335 especies (LPWG, 2017).
Distribución: predominantemente regiones tropicales y subtropicales; Cercis — en zonas templadas cálidas del hemisferio norte (LPWG, 2017).
Caracteres morfológicos clave:
- Árboles, arbustos o lianas con zarcillos, a menudo con espinas o aguijones; ramas a veces modificadas en cladodios (LPWG, 2017).
- Hojas unifolioladas o bifolioladas (nunca pinnadas o bipinnadas); folíolos enteros o bilobados, con un pequeño mucrón en el ápice o entre los lóbulos (LPWG, 2017).
- Estípulas laterales, libres; nectarios extraflorales especializados, si están presentes, estipulares, nunca en el pecíolo o el raquis (LPWG, 2017).
- Flores bisexuales o unisexuales, ligeramente a fuertemente zigomorfas, a veces papilionáceas (en Cercis); cáliz gamosépalo, lobulado o libre; pétalos libres, 5 (raramente 2, 6 o ausentes), imbricados, pétalo adaxial (superior) el más interno (LPWG, 2017).
- Estambres generalmente 10 (a veces menos), en dos verticilos de longitud desigual; filamentos parcialmente soldados o libres; anteras generalmente uniformes, dorsifijas, que se abren por hendiduras longitudinales o poros apicales (LPWG, 2017).
- Polen 3-colpado, 3–6-colpado, 3-porado o 3–4-colporoide, generalmente en mónadas, raramente en tétradas (LPWG, 2017).
- Gineceo de un solo carpelo; ovario súpero, 1-muchos óvulos; fruto legumbre, dehiscente (a menudo de forma explosiva) o indehiscente, entonces generalmente samaroide (LPWG, 2017).
- Semillas con hilo apical semilunar, raramente redondeado; lente poco visible; pleurograma, pseudopleurograma, ala o arilo ausentes (LPWG, 2017).
- Nódulos radiculares ausentes (LPWG, 2017).
Importancia económica: Cercis (árbol del amor) — ornamental; Bauhinia (bauhinia) — ornamental; Griffonia — fuente de 5-hidroxitriptófano (LPWG, 2017).
Detarioideae Burmeist.
Género tipo: Detarium Juss.
Número de géneros y especies: 84 géneros, alrededor de 760 especies (LPWG, 2017).
Distribución: pantropical, con centros de diversidad en África tropical y Sudamérica (LPWG, 2017).
Caracteres morfológicos clave:
- Árboles inermes, a veces arbustos, raramente subarbustos (LPWG, 2017).
- Hojas paripinnadas (que terminan en un par de folíolos) o bifolioladas, raramente unifolioladas (LPWG, 2017).
- Estípulas intrapeciolares, libres o soldadas, a menudo unidas por pelos escamosos; raramente laterales y libres (LPWG, 2017).
- Flores bisexuales o con flores bisexuales y estaminadas, radialmente simétricas o ligera a fuertemente zigomorfas, pero nunca papilionáceas; hipanto presente, alargado o casi ausente (LPWG, 2017).
- Sépalos 5 (raramente 4), libres o soldados, a menudo petaloides; pétalos 0–5(–7), libres, imbricados, pétalo adaxial el más interno (LPWG, 2017).
- Estambres 10, a veces 2-muchos, libres o soldados; anteras generalmente dorsifijas, que se abren por hendiduras longitudinales (LPWG, 2017).
- Polen 3-colpado o 3-colporado, a menudo con escultura diversa (LPWG, 2017).
- Gineceo de un solo carpelo; ovario súpero, 1-muchos óvulos; fruto legumbre, generalmente leñosa, dehiscente, a veces indehiscente, raramente samaroide (LPWG, 2017).
- Semillas a menudo con pseudopleurograma; a veces con arilo; pleurograma ausente (LPWG, 2017).
- Nódulos radiculares ausentes (LPWG, 2017).
Importancia económica: Tamarindus indica (tamarindo) — planta alimenticia y especiera; Hymenaea courbaril (copal) — fuente de resina; Brownea, Amherstia, Saraca — ornamentales; Detarium — alimenticio y medicinal; muchos géneros producen madera valiosa (LPWG, 2017).
Duparquetioideae Legume Phylogeny Working Group (stat. nov.)
Género tipo: Duparquetia Baill.
Número de géneros y especies: 1 género, 1 especie — Duparquetia orchidacea Baill. (LPWG, 2017).
Distribución: África tropical occidental (LPWG, 2017).
Caracteres morfológicos clave:
- Liana trepadora inerme (LPWG, 2017).
- Hojas imparipinnadas (LPWG, 2017).
- Estípulas laterales, libres (LPWG, 2017).
- Flores zigomorfas, 4-meras; sépalos petaloides; pétalos libres, pétalo adaxial el más externo (LPWG, 2017).
- Estambres 4; filamentos libres; anteras que se abren por poros apicales (LPWG, 2017).
- Polen asimétrico, monocolpado, con anillo ecuatorial (LPWG, 2017).
- Gineceo de un solo carpelo; ovario súpero, 2–5 óvulos; fruto legumbre leñosa dehiscente, 4-angulosa, valvas enrolladas en espiral (LPWG, 2017).
- Semillas 2–5, oblongo-ovadas, con tegumento grueso, sin pleurograma (LPWG, 2017).
- Nódulos radiculares ausentes (LPWG, 2017).
Importancia económica: planta ornamental (LPWG, 2017).
Dialioideae Legume Phylogeny Working Group (stat. nov.)
Género tipo: Dialium L.
Número de géneros y especies: 17 géneros, alrededor de 85 especies (LPWG, 2017).
Distribución: pantropical, con centros de diversidad en Sudamérica, África, Madagascar, Sudeste Asiático y Australia (LPWG, 2017).
Caracteres morfológicos clave:
- Árboles o arbustos inermes, raramente subarbustos (LPWG, 2017).
- Hojas imparipinnadas, raramente paripinnadas, 1-folioladas o palmeadas (LPWG, 2017).
- Estípulas laterales, libres o ausentes (LPWG, 2017).
- Flores bisexuales, radialmente simétricas o ligera a fuertemente zigomorfas, a veces papilionáceas; hipanto generalmente ausente, raramente presente (LPWG, 2017).
- Sépalos (3)4–5(–6), libres o soldados; pétalos (3)4–5(–6), libres, raramente ausentes, imbricados, pétalo adaxial el más interno (LPWG, 2017).
- Estambres 5 o menos, raramente 6–10, libres, raramente soldados; anteras que se abren por hendiduras longitudinales o poros apicales (LPWG, 2017).
- Polen 3-colpado, con o sin poros, a menudo con escultura reticulada (LPWG, 2017).
- Gineceo de un solo carpelo, a veces 2-carpelar; ovario súpero, generalmente 2-óvulos, raramente 1-muchos óvulos; fruto generalmente indehiscente, nuez o drupa, raramente dehiscente (LPWG, 2017).
- Semillas 1–2, raramente más, sin pleurograma (LPWG, 2017).
- Nódulos radiculares ausentes (LPWG, 2017).
Importancia económica: Dialium (tamarindo-dialium) — alimenticio (frutos); Apuleia, Zenia — ornamentales; algunos géneros producen madera (LPWG, 2017).
Caesalpinioideae DC. (emend.)
Género tipo: Caesalpinia L.
Número de géneros y especies: 148 géneros, alrededor de 4400 especies (LPWG, 2017).
Distribución: pantropical, con centros de diversidad en los trópicos de América, África y Asia; algunos géneros alcanzan regiones templadas (LPWG, 2017).
Caracteres morfológicos clave:
- Árboles, arbustos, lianas, subarbustos o hierbas, a veces acuáticas; inermes o a menudo con espinas o aguijones (LPWG, 2017).
- Hojas generalmente bipinnadas, menos a menudo pinnadas (a veces ambos tipos en la misma planta), raramente bifolioladas, modificadas en filodios o ausentes; folíolos generalmente opuestos, raramente alternos (LPWG, 2017).
- Estípulas laterales, libres o ausentes (LPWG, 2017).
- Flores generalmente bisexuales, raramente unisexuales, o bisexuales combinadas con unisexuales y/o estériles en inflorescencias heteromorfas; radialmente simétricas, menos a menudo zigomorfas o asimétricas; hipanto ausente o cupuliforme, raramente tubular (LPWG, 2017).
- Sépalos (3–)5–6, libres o soldados; pétalos (3–)5–6, libres o soldados (a veces uno o ambos verticilos ausentes), estivación valvada (en mimosoideas) o imbricada, y entonces pétalo adaxial el más interno (LPWG, 2017).
- Estambres generalmente 10, raramente 3, 4 o 5, a menudo numerosos (más de 100 en algunas mimosoideas), libres o soldados, a veces heteromorfos; anteras dorsifijas o basifijas, a menudo con glándula apical, que se abren por hendiduras longitudinales o poros apicales/basales (LPWG, 2017).
- Polen en mónadas 3-colporadas, o generalmente en tétradas, bitétradas o poliadas (en la mayoría de las mimosoideas) (LPWG, 2017).
- Gineceo de un solo carpelo, raramente multicarpelar; ovario súpero, 1-muchos óvulos; fruto generalmente de valvas delgadas, legumbre 1-muchas semillas, dehiscente por una o ambas suturas, también a menudo lomentáceo (lomentum), alado (craspedium) o grueso y leñoso, entonces indehiscente o dehiscente de forma explosiva, a menudo curvado o enrollado en espiral (LPWG, 2017).
- Semillas generalmente con pleurograma abierto o cerrado en ambos lados, a veces con arilo carnoso (en Pithecellobium y algunas Acacia) o sarcotesta (en Inga), a veces aladas; hilo generalmente apical; lente generalmente poco visible; embrión recto (LPWG, 2017).
- Nódulos radiculares variables, pero a menudo presentes e indeterminados (especialmente en mimosoideas) (LPWG, 2017).
Importancia económica: Acacia s.l. (acacia) — madera, taninos, gomas; Senna (sen) — medicinal; Cassia (casia) — medicinal y ornamental; Caesalpinia (cesalpinia) — ornamental, colorantes; Tamarindus — alimenticio; Prosopis (mezquite) — forrajero, maderable; Inga (inga) — alimenticio, forrajero; Parkia — alimenticio; Albizia (albizia) — ornamental; Mimosa (mimosa) — ornamental; Pithecellobium — ornamental; muchos géneros producen madera valiosa (LPWG, 2017).
Nota importante: En el nuevo sentido, Caesalpinioideae incluyen el clado mimosoide (Mimosoideae en el sentido tradicional), que se considera un grupo informal dentro de Caesalpinioideae hasta que se desarrolle una clasificación formal tribal y/o cládica de esta subfamilia (LPWG, 2017).
Faboideae DC. (Papilionoideae)
Género tipo: Faba Mill. (= Vicia L.)
Número de géneros y especies: 503 géneros, alrededor de 14 000 especies (LPWG, 2017).
Distribución: cosmopolita, con centros de diversidad en regiones templadas y tropicales (LPWG, 2017).
Caracteres morfológicos clave:
- Predominantemente árboles, arbustos, lianas, hierbas, trepadoras con zarcillos, inermes (LPWG, 2017).
- Hojas generalmente paripinnadas o imparipinnadas, palmaticompuestas, también a menudo unifolioladas o trifolioladas, raramente bifolioladas o tetrafolioladas, nunca bipinnadas; folíolos opuestos o alternos, a veces modificados en zarcillos, raramente filodios (LPWG, 2017).
- Estípulas laterales (muy raramente interpeciolares, en Platymiscium), libres o ausentes; estipelas presentes o ausentes (LPWG, 2017).
- Flores bisexuales, raramente unisexuales, generalmente zigomorfas, papilionáceas: pétalo superior (adaxial) — el «estandarte» (standard, vexillum) — el más grande y dispuesto por fuera, dos pétalos laterales — «alas» (wings), dos inferiores — «quilla» (keel), a menudo soldados; estivación descendente (LPWG, 2017; Judd et al., 2018).
- Sépalos (3–)5, soldados, a veces el cáliz es entero y se rasga en lóbulos irregulares o los lóbulos son dimórficos, algunos petaloides (LPWG, 2017).
- Pétalos (0–)5(–6), imbricados, corola generalmente papilionácea, raramente radialmente simétrica o casi radialmente simétrica (LPWG, 2017).
- Estambres generalmente 10, raramente 9 o numerosos; filamentos con mayor frecuencia soldados en un tubo o vaina, o el estambre superior total o parcialmente libre, a veces todos los filamentos libres (LPWG, 2017).
- Polen generalmente en mónadas, 3-colpado, 3-colporado o 3-porado (LPWG, 2017).
- Gineceo de un solo carpelo, raramente 2-carpelar; ovario súpero, 1-muchos óvulos; fruto legumbre 1-muchas semillas, dehiscente por una o ambas suturas, o indehiscente, o lomentáceo (lomentum), sámara o drupa (LPWG, 2017).
- Semillas generalmente con tegumento duro, raramente engrosado, a veces con arilo carnoso o sarcotesta; válvula hilar compleja, hilo alargado y lente generalmente presentes; pleurograma ausente (LPWG, 2017).
- Embrión generalmente curvado, raramente recto (LPWG, 2017).
- Nódulos radiculares generalmente presentes, determinados o indeterminados (LPWG, 2017).
Importancia económica: Es la subfamilia más importante desde el punto de vista económico, e incluye la mayoría de las leguminosas alimenticias, forrajeras, oleaginosas y ornamentales: Pisum (guisante), Vicia (haba, veza), Lens (lenteja), Cicer (garbanzo), Phaseolus (frijol), Glycine (soja), Arachis (cacahuete), Medicago (alfalfa), Trifolium (trébol), Lupinus (altramuz), Vigna (vigna), Cajanus (guandú), Onobrychis (esparceta) y muchos otros (LPWG, 2017; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
2.6. Caracteres morfológicos clave para la identificación de subfamilias
Para la identificación práctica de las subfamilias se puede utilizar la siguiente clave (LPWG, 2017; Judd et al., 2018):
1. Hojas bipinnadas; semillas generalmente con pleurograma abierto o cerrado en ambos lados — Caesalpinioideae (en el nuevo sentido, incluyendo el clado mimosoide).
1. Hojas nunca bipinnadas; semillas sin pleurograma — 2.
2. Hojas unifolioladas, bilobadas o enteras, o compuestas y bifolioladas; hilo de la semilla redondeado o semilunar — 3.
2. Hojas diversas; si son simples o bifolioladas, entonces el hilo de la semilla no es semilunar y raramente redondeado — 4.
3. Nectarios extraflorales y otras estructuras glandulares (si están presentes) en la superficie inferior o en el borde de los folíolos; estípulas generalmente intrapeciolares (libres o soldadas), raramente laterales — Detarioideae.
3. Nectarios extraflorales ausentes o presentes en el pecíolo o en el raquis; estípulas laterales y libres o ausentes — Cercidoideae.
4. Inflorescencias fuertemente ramificadas, tirsoides, o racimos con disposición de flores en dos filas; hojas generalmente imparipinnadas con folíolos alternos; nectarios extraflorales en el pecíolo o raquis ausentes — Dialioideae.
4. Inflorescencias generalmente racimos con disposición espiralada de las flores, a menudo reunidas en panículas ramificadas o condensadas en espigas o glomérulos; hojas generalmente paripinnadas con folíolos opuestos, raramente bifolioladas o con folíolos alternos; nectarios extraflorales (si están presentes) en el pecíolo o en el raquis entre pares de folíolos — Caesalpinioideae (incluyendo el clado mimosoide).
5. Flores generalmente papilionáceas y zigomorfas, raramente radialmente simétricas; pétalo medio (adaxial) el más externo, envolviendo a los demás pétalos en el botón, o pétalos ausentes; sépalos soldados, al menos en la base, en un tubo o envolviendo completamente el botón; semillas con válvula hilar compleja, pleurograma ausente; embrión generalmente curvado — Faboideae (Papilionoideae).
5. Flores no papilionáceas (si raramente parecen papilionáceas, entonces el pétalo medio el más interno), ya sean zigomorfas o radialmente simétricas, pétalo medio (adaxial) el más interno, o pétalos valvados (en el clado mimosoide de Caesalpinioideae); sépalos libres o soldados; semillas sin válvula hilar compleja, con o sin pleurograma; embrión generalmente recto — Caesalpinioideae (en sentido amplio).
Esta clave refleja las principales diferencias morfológicas entre las seis subfamilias y puede utilizarse para identificar géneros y especies de leguminosas en el campo.
2.7. Aspectos evolutivos y filogenéticos
La nueva clasificación del LPWG (2017) refleja no solo las concepciones filogenéticas modernas, sino también las tendencias evolutivas de la familia. Cabe señalar varios puntos clave:
1. Antigüedad de la familia. Las leguminosas son un grupo antiguo cuyos restos fósiles se conocen desde el Cretácico temprano (hace unos 135 millones de años), y cuyo posible origen se remonta al Jurásico (hace más de 140 millones de años) (Judd et al., 2018; LPWG, 2017). La diversificación de los clados principales de la familia aparentemente ocurrió en el Cretácico y el Paleógeno (Lavin et al., 2005; LPWG, 2017).
2. Linajes basales. Los linajes divergentes más tempranos de la familia — Cercidoideae, Detarioideae, Duparquetioideae y Dialioideae — conservaron una serie de caracteres plesiomórficos, como la ausencia de nódulos radiculares, flores a menudo no papilionáceas y frutos leñosos (LPWG, 2017; Bruneau et al., 2008). Estos grupos tienen una distribución predominantemente tropical y subtropical.
3. Gran clado Caesalpinioideae + Faboideae. Los clados más jóvenes y más ricos en especies — las Caesalpinioideae redefinidas (incluyendo las mimosoideas) y las Faboideae — muestran una diversidad morfológica y ecológica significativa e incluyen la mayoría de los géneros de importancia económica (LPWG, 2017; Judd et al., 2018).
4. Evolución de la simbiosis con rizobios. La capacidad de formar nódulos radiculares con bacterias fijadoras de nitrógeno aparentemente surgió varias veces en la evolución de las leguminosas o fue heredada de un ancestro común con pérdidas posteriores en algunos linajes (Doyle, 2011, 2012; LPWG, 2017). Las subfamilias basales (Cercidoideae, Detarioideae, Duparquetioideae, Dialioideae) no forman nódulos, mientras que Caesalpinioideae (incluyendo las mimosoideas) y Faboideae incluyen tanto especies nodulantes como no nodulantes (LPWG, 2017; Sprent, 2007; Lambers & Oliveira, 2019).
5. Evolución morfológica de la flor. Tradicionalmente se consideraba que la flor papilionácea de Faboideae era el tipo floral más especializado de la familia, y las flores actinomorfas de Mimosoideae las más primitivas. Sin embargo, los datos filogenéticos muestran que las flores actinomorfas de las mimosoideas son derivadas de ancestros zigomorfos, y no al revés (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). Este es un ejemplo de homoplasia — aparición paralela o convergente de caracteres similares en diferentes linajes.
6. Parafilia de Caesalpinioideae s.l. y necesidad de una nueva clasificación. Precisamente el carácter parafilético de las Caesalpinioideae tradicionales y el anidamiento de Mimosoideae y Faboideae en este grado sirvieron como razón principal para desarrollar la nueva clasificación del LPWG (2017). El nuevo sistema reconoce solo grupos monofiléticos, lo que corresponde a los principios de la sistemática filogenética (Judd et al., 2018).
2.8. Importancia de la nueva clasificación para la agroesfera
La nueva clasificación del LPWG (2017) tiene una importancia práctica significativa para la agronomía, el fitomejoramiento y la protección de plantas:
1. Identificación precisa. La comprensión de las relaciones filogenéticas permite identificar con mayor precisión géneros y especies de leguminosas, lo cual es crítico para la cuarentena vegetal, la producción de semillas y la introducción.
2. Fitomejoramiento y recursos genéticos. El conocimiento de la filogenia ayuda a identificar los parientes silvestres más cercanos de las especies cultivadas, que pueden servir como donantes de genes de resistencia a enfermedades, plagas y estrés abiótico (Prohens & Nuez, 2008; LPWG, 2017).
3. Fijación simbiótica de nitrógeno. La comprensión de la evolución de la simbiosis con rizobios permite seleccionar de manera dirigida cepas bacterianas eficaces para la inoculación de semillas y desarrollar estrategias para el uso de leguminosas en rotaciones de cultivos (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019).
4. Producción de forrajes. La nueva clasificación ayuda a sistematizar las leguminosas forrajeras y evaluar su valor nutritivo y propiedades agrotécnicas (Connor et al., 2011).
5. Plantas arvenses. Muchas leguminosas son malas hierbas (por ejemplo, algunas especies de Vicia, Lathyrus, Mimosa). La identificación precisa y la comprensión de sus relaciones filogenéticas son necesarias para desarrollar medidas de control eficaces (LPWG, 2017).
3. Géneros clave y su importancia económica
En los capítulos anteriores examinamos las características generales de la familia de las leguminosas, su posición filogenética y la nueva clasificación del LPWG (2017), que reconoce seis subfamilias. Ahora pasaremos a una revisión detallada de los géneros más importantes de leguminosas, de primordial importancia para la alimentación humana, la alimentación animal y la agricultura sostenible. Examinaremos su posición sistemática, origen, características biológicas y uso económico.
3.1. Cultivos alimentarios del Viejo Mundo
Pisum — guisante
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Fabeae (LPWG, 2017). El género Pisum L. incluye una especie polimórfica, Pisum sativum L., con varias subespecies y variedades (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Algunos autores distinguen hasta cinco especies, pero la taxonomía moderna las considera un complejo único (Prohens & Nuez, 2008).
Origen y domesticación: El antepasado silvestre del guisante no se ha establecido con precisión. Los centros de origen más probables son Asia Central, Abisinia y la cuenca del Mediterráneo, con Oriente Próximo como centro secundario (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El guisante es uno de los cultivos más antiguos: se han encontrado semillas carbonizadas de 7000–9000 años en yacimientos arqueológicos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La domesticación condujo a la aparición de formas de semilla grande con un hábito corto y compacto, así como a la segregación por tipos de uso: grano, forraje y hortaliza (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: El guisante es una planta herbácea anual de ciclo corto con germinación hipogea (los cotiledones permanecen bajo tierra) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las hojas son alternas, compuestas, con zarcillos en el extremo; en algunos cultivares todos los folíolos se transforman en zarcillos (tipo afila), lo que aumenta la resistencia al encamado (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las flores son hermafroditas, generalmente autopolinizadas, blancas, rosadas, violetas o púrpuras. Las vainas son bivalvas, dehiscentes, con 3–10 semillas. Las semillas son esféricas o angulosas, lisas o arrugadas, con alto contenido de almidón (lisas) o azúcar (arrugadas) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: El guisante es un cultivo de leguminosa de grano y hortícola muy importante de las latitudes templadas. Las semillas contienen 20–25 % de proteína, 50–60 % de carbohidratos, vitaminas y minerales (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se distinguen tres tipos principales de variedades (Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- De desgrane (garden, English peas): se cultivan por sus semillas inmaduras, utilizadas frescas, en conserva y congeladas;
- De azúcar (snow peas, sugar peas): con vainas inmaduras que se consumen enteras (las valvas no tienen capa pergaminosa);
- De grano (field peas): se cultivan por sus semillas maduras secas, utilizadas como alimento y forraje para animales.
El guisante es una fuente importante de proteína vegetal en la dieta humana, especialmente en combinación con cereales. Los guisantes verdes son una hortaliza popular, rica en vitaminas A, B, C y hierro (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Como cultivo fijador de nitrógeno, el guisante desempeña un papel importante en las rotaciones, enriqueciendo el suelo con nitrógeno (Marschner, 2012). Principales productores: China, India, Francia, Rusia, EE. UU. (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Vicia — habas, veza
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Fabeae (LPWG, 2017). El género Vicia L. incluye alrededor de 140–150 especies, distribuidas principalmente en las zonas templadas del hemisferio norte (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Origen y domesticación: Los antepasados silvestres de Vicia faba no se conocen; la patria probable es Oriente Próximo y el Mediterráneo occidental, con centros secundarios de diversidad en Afganistán y Etiopía (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las habas son un cultivo antiguo del Mediterráneo y los subtrópicos, cultivado desde el Neolítico (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La veza (Vicia sativa, V. villosa y otras) son cultivos forrajeros originarios del Mediterráneo y Asia Anterior (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: Vicia faba es una anual erecta de 50–180 cm de altura, con una raíz pivotante robusta y tallos huecos cuadrangulares (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las hojas son paripinnadas, con 4–8 folíolos, sin zarcillos (a diferencia del guisante). Las flores son hermafroditas, autopolinizadas, blancas con nervaduras violetas, reunidas en racimos axilares. Las vainas son grandes, carnosas, con 4–6 semillas. Las semillas son grandes (2–3 cm), planas, ovaladas, desde marrón claro hasta negras (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: Vicia faba (haba, haba común, faba) es un cultivo alimentario y forrajero importante. Se distinguen tres variedades (Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- V. faba var. major — habas hortícolas de semilla grande;
- V. faba var. equina — habas forrajeras de semilla mediana;
- V. faba var. minor — habas de campo de semilla pequeña.
Las semillas contienen 22–36 % de proteína, 50–60 % de carbohidratos, 1–2 % de grasa (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Sin embargo, contienen taninos y vicina/convina, que pueden provocar «favismo», una anemia hemolítica en personas predispuestas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las habas son un cultivo importante en China, Egipto, Etiopía, Italia y Marruecos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La veza (V. sativa, V. villosa, V. ervilia) se utiliza como cultivo forrajero, abono verde y enmienda verde (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Connor et al., 2011).
Lens — lenteja
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Fabeae (LPWG, 2017). El género Lens Mill. incluye 5–7 especies, de las cuales Lens culinaris Medikus (= L. esculenta) es la única especie cultivada (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Origen y domesticación: Los centros de origen y diversidad se consideran el Mediterráneo occidental y Asia Sudoccidental, donde la lenteja se cultiva desde hace miles de años (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Es uno de los cultivos de leguminosas de grano más antiguos, conocido desde el Neolítico (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: La lenteja es una anual pequeña (25–40 cm), muy ramificada, semierecta, con un período vegetativo corto (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las hojas son paripinnadas, con 3–8 pares de folíolos y zarcillos en el extremo. Las flores son pequeñas, blancas, rosadas o azuladas, autopolinizadas. Las vainas son cortas (2–3 cm) y contienen 1–2 semillas. Las semillas son lenticulares, de 3–9 mm de diámetro, desde amarillas hasta marrones y negras (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se distinguen variedades de semilla grande (macrospermae) y de semilla pequeña (microspermae) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: La lenteja es una fuente importante de proteína (alrededor del 25 %) y carbohidratos (alrededor del 55 %) en la dieta de la población de Asia Meridional, Oriente Próximo y el Mediterráneo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las semillas se utilizan para preparar sopas, purés y guarniciones; en India, para preparar dal (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La lenteja posee un alto valor nutritivo, es rica en hierro, fósforo y vitaminas del grupo B (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Principales productores: India, Canadá, Turquía, Australia, EE. UU. (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Como cultivo fijador de nitrógeno, la lenteja mejora la fertilidad del suelo (Marschner, 2012).
Cicer — garbanzo
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Cicereae (LPWG, 2017). El género Cicer L. incluye alrededor de 40 especies, de las cuales Cicer arietinum L. es la única especie cultivada (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Origen y domesticación: No se han encontrado antepasados silvestres del garbanzo; el probable centro de origen es Asia Sudoccidental (sureste de Turquía), con centros de diversidad en Asia Sudoccidental, el Mediterráneo y Etiopía (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El garbanzo es el segundo cultivo de leguminosa de grano más importante del mundo después de la soja (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: El garbanzo es una anual erecta y ramificada de 50–60 cm de altura, cubierta de pelos glandulares que secretan un líquido cáustico (ácidos málico y oxálico) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las hojas son imparipinnadas, con 3–8 pares de folíolos, sin zarcillos. Las flores son hermafroditas, autopolinizadas, blancas, rosadas o azuladas. Las vainas son cortas, infladas, con 1–3 semillas. Las semillas son grandes, de forma irregular, con un pico, desde beige hasta marrón oscuro y negras (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se distinguen dos tipos principales (Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Kabuli: semillas grandes, claras, redondeadas;
- Desi: semillas pequeñas, oscuras, angulosas.
Importancia económica: El garbanzo es una fuente importantísima de proteína (alrededor del 23 %) y carbohidratos (alrededor del 60 %) en la dieta de la población de India, Pakistán, Oriente Próximo y África del Norte (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las semillas se utilizan para preparar dal, hummus, falafel y harina; las vainas verdes y los brotes jóvenes se consumen como hortaliza (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El garbanzo posee un alto valor nutritivo, es rico en proteína, fibra, vitaminas y minerales (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Principales productores: India (alrededor del 70 % de la producción mundial), Pakistán, Turquía, Myanmar, Etiopía (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Como cultivo fijador de nitrógeno, el garbanzo mejora la fertilidad del suelo (Marschner, 2012).
3.2. Cultivos de origen americano
Phaseolus — frijol
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Phaseoleae (LPWG, 2017). El género Phaseolus L. incluye alrededor de 50–60 especies, distribuidas en el Neotrópico (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las especies cultivadas más importantes: P. vulgaris (frijol común), P. lunatus (frijol de Lima), P. coccineus (frijol escarlata o judía turca), P. acutifolius (tepari) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008).
Origen y domesticación: El género Phaseolus procede de la región neotropical de América (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El P. vulgaris silvestre ya estaba diferenciado en dos grandes acervos genéticos —mesoamericano y andino— con una distribución geográfica característica (Prohens & Nuez, 2008; Gepts, 1998). La domesticación de P. vulgaris ocurrió en zonas de altura de América Latina hace más de 7000 años (Prohens & Nuez, 2008; Gepts & Debouck, 1991). Se domesticaron cinco especies de Phaseolus: P. coccineus en México; P. vulgaris en Mesoamérica y América del Sur (probablemente al menos dos domesticaciones independientes); P. lunatus independientemente en México y Perú; P. acutifolius en México; P. polyanthus en Mesoamérica (Prohens & Nuez, 2008; Debouck, 1999; Singh, 2001).
Características biológicas: Phaseolus vulgaris es una anual con germinación epigea (los cotiledones se elevan sobre el suelo) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El hábito varía desde determinado arbustivo (tipo I) hasta indeterminado trepador (tipo IV) (Prohens & Nuez, 2008; Singh, 1999). Las hojas son trifoliadas. Las flores son hermafroditas, autopolinizadas, blancas, rosadas o violetas. Las vainas miden 8–20 cm o más, de forma y color variables (verdes, amarillas, púrpuras) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las semillas son de forma y color diversos y contienen 20–25 % de proteína (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: Phaseolus vulgaris es el cultivo de leguminosa de grano y hortícola más importante del mundo. Se distinguen varios grupos de variedades según su uso (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Hortícolas (ejotes, snap beans): vainas inmaduras consumidas frescas, congeladas y en conserva; las valvas no tienen capa pergaminosa ni fibras;
- Semihortícolas (haricot filet): vainas con fibras, pero consumidas inmaduras;
- De grano (dry beans): semillas maduras secas, utilizadas para sopas, purés y conservas;
- Verdes (green shell): semillas inmaduras pero completamente formadas, consumidas frescas.
Entre las variedades de grano se distinguen clases comerciales: kidney, navy, pinto, black, cranberry, cannellini, etc. (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008). P. lunatus (frijol de Lima) es un cultivo importante de los trópicos y subtrópicos, con semillas grandes y pequeñas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). P. coccineus (frijol escarlata) es una hortaliza popular en Europa, especialmente en el Reino Unido (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). P. acutifolius (tepari) es un cultivo resistente a la sequía del suroeste de EE. UU. y México, utilizado como donante de genes de resistencia a enfermedades y sequía (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Principales productores de frijol: India, Brasil, México, China, EE. UU., Myanmar (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Arachis — cacahuete
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Dalbergieae (LPWG, 2017). El género Arachis L. incluye alrededor de 70 especies, distribuidas en América del Sur (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La especie cultivada es Arachis hypogaea L.
Origen y domesticación: El cacahuete procede de América del Sur, probablemente de la región al este de los Andes (suroeste de Brasil, Bolivia, Paraguay, norte de Argentina) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se cultiva desde hace más de 5000 años (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Actualmente se cultiva en los trópicos, subtrópicos y zonas templadas cálidas hasta los 40° de latitud (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: El cacahuete es una anual con dos formas principales: arbustiva (bunch) y rastrera (runner) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las hojas son paripinnadas, con dos pares de folíolos. Las flores son hermafroditas, autopolinizadas, amarillas, axilares. Tras la polinización, el pedúnculo floral (ginóforo) se alarga, penetra en el suelo y allí se desarrolla el fruto (vaina) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las vainas contienen 1–4 semillas. Las semillas contienen 30 % de proteína, 40–50 % de aceite y 10–25 % de carbohidratos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: El cacahuete es un cultivo oleaginoso y proteico importante. Las semillas se consumen tostadas y saladas, y se utilizan para producir aceite de cacahuete, margarina y productos de confitería (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La torta es un forraje valioso para el ganado. Las vainas y semillas jóvenes se consumen como hortaliza (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Principales productores: China, India, EE. UU., Nigeria, Indonesia, Sudán (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Como cultivo fijador de nitrógeno, el cacahuete mejora la fertilidad del suelo (Marschner, 2012).
3.3. Cultivos de origen esteasiático
Glycine — soja
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Phaseoleae, subtribu Glycininae (LPWG, 2017). El género Glycine Willd. incluye alrededor de 20 especies, distribuidas en Australia, Asia Oriental y Sudoriental (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La especie cultivada es Glycine max (L.) Merr.
Origen y domesticación: No se han encontrado formas silvestres de Glycine max; G. soja es una anual que crece en China oriental, se cruza con G. max y posiblemente sea el antepasado silvestre (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Otra hipótesis: G. max es un cultígeno surgido de la hibridación de G. ussuriensis con G. tomentosa, ambas especies silvestres de Asia Oriental y China meridional (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Según antiguas fuentes chinas, la soja se cultiva desde 2800 a. C. (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Es una planta subtropical de día corto; la domesticación condujo a la aparición de numerosas variedades locales y cultivares adaptados a diferentes latitudes (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: La soja es una anual erecta y ramificada de 70–150 cm de altura, con un sistema radical robusto (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las hojas son trifoliadas y pubescentes. Las flores son hermafroditas, autopolinizadas, blancas, lilas o púrpuras, reunidas en racimos axilares. Las vainas generalmente contienen 2–3 semillas. Las semillas son esféricas o aplanadas, desde amarillas hasta negras, y contienen hasta 50 % de proteína, 15–25 % de aceite y 15–25 % de carbohidratos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: La soja es el cultivo oleaginoso y proteico más importante del mundo. Las semillas se utilizan para producir aceite, harina de soja, tofu, salsa de soja, miso, leche de soja y también como forraje para el ganado (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las semillas verdes (inmaduras) se consumen como hortaliza (edamame) en Asia Oriental (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El aceite de soja es uno de los aceites vegetales más importantes del mundo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Principales productores: EE. UU. (alrededor del 50 % de la producción mundial), Brasil, China, Argentina, India (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Como cultivo fijador de nitrógeno, la soja desempeña un papel clave en las rotaciones (Marschner, 2012; Connor et al., 2011).
3.4. Gramíneas forrajeras y leguminosas de pastizal
Medicago — alfalfa
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Trifolieae (LPWG, 2017). El género Medicago L. incluye alrededor de 85 especies, distribuidas en zonas templadas y subtropicales de Eurasia, África y América del Sur (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La especie cultivada más importante es Medicago sativa L. (alfalfa).
Origen y domesticación: La alfalfa procede de Asia Sudoccidental (Irán, Turquía, Cáucaso), donde se cultiva desde hace más de 3000 años (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se cultiva ampliamente en zonas templadas y subtropicales de todo el mundo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: La alfalfa es una planta herbácea perenne con un sistema radical robusto que penetra hasta 10–15 m de profundidad (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Los tallos son erectos o ascendentes, de 60–120 cm de altura. Las hojas son trifoliadas. Las flores son hermafroditas, alógamas (polinizadas por abejas), violetas, azules o amarillas, reunidas en racimos. Las vainas son espiraladas y contienen varias semillas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: La alfalfa es el cultivo forrajero más importante del mundo. Se utiliza para producir heno, ensilado, forraje verde y harina de hierba (Connor et al., 2011; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se caracteriza por un alto contenido de proteína (15–25 %), vitaminas y minerales (Connor et al., 2011). La alfalfa es uno de los cultivos fijadores de nitrógeno más eficaces: fija de 180 a 780 kg N/ha por temporada (Marschner, 2012). Se utiliza ampliamente en rotaciones para mejorar la fertilidad del suelo (Connor et al., 2011). Principales productores: EE. UU., Rusia, China, Argentina, Francia (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Trifolium — trébol
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Trifolieae (LPWG, 2017). El género Trifolium L. incluye alrededor de 300 especies, distribuidas en zonas templadas y subtropicales de los hemisferios norte y sur (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las especies cultivadas más importantes: T. repens (trébol blanco), T. pratense (trébol rojo), T. subterraneum (trébol subterráneo), T. hybridum (trébol híbrido) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Origen y domesticación: El trébol procede del Mediterráneo y Europa, donde se cultiva desde la Antigüedad (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se cultiva ampliamente en zonas templadas de todo el mundo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: El trébol es una planta herbácea perenne o anual con hojas trifoliadas y características inflorescencias capitadas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las flores son hermafroditas, alógamas (polinizadas por abejas y abejorros), blancas, rosadas, rojas o violetas. Las vainas son pequeñas y contienen 1–4 semillas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: El trébol es el cultivo forrajero más importante de las latitudes templadas. Se utiliza para pastos, praderas de siega, ensilado y abono verde (Connor et al., 2011; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se caracteriza por un alto contenido de proteína y valor nutritivo (Connor et al., 2011). El trébol es un fijador eficaz de nitrógeno: fija de 64 a 250 kg N/ha por temporada (Marschner, 2012). Se utiliza ampliamente en rotaciones (Connor et al., 2011). Principales productores: EE. UU., Europa, Australia, Nueva Zelanda (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Onobrychis — esparceta
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Hedysareae (LPWG, 2017). El género Onobrychis Mill. incluye alrededor de 130 especies, distribuidas en zonas templadas y subtropicales de Eurasia y África del Norte (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La especie cultivada más importante es Onobrychis viciifolia Scop. (esparceta).
Origen y domesticación: Esparceta procede del sureste de Europa y Asia Occidental, donde se cultiva desde el siglo XVIII (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se cultiva en zonas templadas de Europa, Asia y América del Norte (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: La esparceta es una planta herbácea perenne con una raíz pivotante robusta que penetra hasta 3–5 m de profundidad (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Los tallos son erectos, de 40–100 cm de altura. Las hojas son imparipinnadas, con 6–14 pares de folíolos. Las flores son hermafroditas, alógamas (polinizadas por abejas), rosadas, púrpuras o blancas, reunidas en racimos. Las vainas son monospermas e indehiscentes (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: La esparceta es un cultivo forrajero valioso, especialmente para regiones áridas. Se utiliza para heno, ensilado, pastos y abono verde (Connor et al., 2011; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Se caracteriza por su alta resistencia a la sequía y al frío, y crece bien en suelos pobres (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La esparceta es un fijador eficaz de nitrógeno y mejora la fertilidad del suelo (Marschner, 2012). Principales productores: Rusia, Kazajistán, Turquía, Irán, EE. UU. (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
3.5. Cultivos oleaginosos
Glycine max — soja (uso oleaginoso)
La soja es el cultivo oleaginoso más importante del mundo. Las semillas contienen 15–25 % de aceite, que se utiliza como alimento, para producir margarina, mayonesa, aceite de ensalada y también con fines técnicos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El aceite de soja ocupa el primer lugar entre los aceites vegetales por volumen de producción en el mundo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Principales productores de soja: EE. UU., Brasil, Argentina, China, India (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Arachis hypogaea — cacahuete (uso oleaginoso)
El cacahuete es un cultivo oleaginoso importante. Las semillas contienen 40–50 % de aceite, que se utiliza como alimento, para producir margarina, productos de confitería y también con fines técnicos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El aceite de cacahuete es un aceite alimentario valioso con alto contenido de ácidos grasos insaturados (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Principales productores de cacahuete: China, India, EE. UU., Nigeria, Indonesia, Sudán (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
3.6. Otros géneros importantes
Lupinus — altramuz
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Genisteae (LPWG, 2017). El género Lupinus L. incluye alrededor de 200–600 especies, distribuidas en el Mediterráneo, África, América del Norte y América del Sur (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las especies cultivadas más importantes: L. albus (altramuz blanco), L. luteus (altramuz amarillo), L. angustifolius (altramuz de hoja estrecha), L. mutabilis (altramuz dulce) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Origen y domesticación: Las especies cultivadas de altramuz proceden de la cuenca mediterránea (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). L. mutabilis procede de América del Sur (Andes) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Lupino es un cultivo antiguo, cultivado en Europa y África como leguminosa de grano, forrajera y abono verde (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: El altramuz es una planta herbácea anual o perenne de 30–150 cm de altura con hojas palmeadas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las flores son hermafroditas, autopolinizadas, blancas, amarillas, azules o violetas, reunidas en racimos terminales. Las vainas contienen 3–6 semillas. Las semillas contienen 30–40 % de proteína y 5–15 % de aceite (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las semillas contienen lupinina, un alcaloide amargo que se elimina por remojo; las variedades modernas («altramuces dulces») prácticamente no contienen alcaloides (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: El altramuz es un cultivo proteico y forrajero valioso. Se utiliza como leguminosa de grano, forraje para el ganado, abono verde y planta ornamental (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Connor et al., 2011). El altramuz es un fijador eficaz de nitrógeno y mejora la fertilidad del suelo (Marschner, 2012). Principales productores: Australia, Polonia, Rusia, Alemania, Chile (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Vigna — vigna, mungo
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Phaseoleae, subtribu Phaseolinae (LPWG, 2017). El género Vigna Savi incluye alrededor de 100–150 especies, distribuidas en los trópicos y subtrópicos de Asia, África y América (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las especies cultivadas más importantes: V. radiata (mungo), V. mungo (urd, mungo negro), V. unguiculata (caupí, vigna), V. angularis (adzuki), V. subterranea (bambara, guisante de tierra), V. umbellata (frijol arroz) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Origen y domesticación: La mayoría de las especies cultivadas de Vigna proceden de Asia (India, China, Sudeste Asiático) o África (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El caupí (V. unguiculata) fue domesticado en África (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El mungo (V. radiata) y el urd (V. mungo) son cultivos antiguos de India (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El adzuki (V. angularis) es un cultivo de Asia Oriental (China, Japón, Corea) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: Vigna son plantas herbáceas anuales con hojas trifoliadas, tallo erecto, rastrero o trepador (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las flores son hermafroditas, autopolinizadas, amarillas, blancas, rosadas o violetas. Las vainas son largas y delgadas, con 6–20 semillas. Las semillas son pequeñas, de color diverso, y contienen 20–25 % de proteína y 50–60 % de carbohidratos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: Vigna son cultivos de leguminosa de grano y hortícolas muy importantes de los trópicos y subtrópicos. El mungo (V. radiata) es un cultivo importante de India y el Sudeste Asiático; se utiliza para producir brotes (bean sprouts), dal y harina (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El urd (V. mungo) es un cultivo importante de India; se utiliza para dal, harina y productos fermentados (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El caupí (V. unguiculata) es el cultivo de leguminosa de grano más importante de África; se utiliza como alimento, forraje y abono verde (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El adzuki (V. angularis) es un cultivo importante de Asia Oriental; se utiliza para preparar an (pasta dulce) y postres (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La vigna de vaina larga (V. unguiculata cultigroup sesquipedalis) es una hortaliza popular del Sudeste Asiático (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Como cultivos fijadores de nitrógeno, Vigna mejora la fertilidad del suelo (Marschner, 2012). Principales productores: India, China, Nigeria, Brasil, Myanmar (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Cajanus — guandú
Posición sistemática: Subfamilia Faboideae, tribu Phaseoleae, subtribu Cajaninae (LPWG, 2017). El género Cajanus Adans. incluye alrededor de 30 especies, distribuidas en los trópicos de Asia, África y Australia (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). La especie cultivada es Cajanus cajan (L.) Huth. (= C. indicus).
Origen y domesticación: El origen del guandú se atribuye a África (sobre la base de hallazgos de formas silvestres), aunque la diversidad en India indica claramente a esta como centro de origen (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El guandú es un cultivo importante de India, donde ocupa enormes superficies; también es significativo en otros países de Asia (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Ocupa el sexto lugar mundial entre los cultivos de leguminosas de grano (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Características biológicas: El guandú es una planta arbustiva de 1–4 m de altura, generalmente cultivada como anual (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las hojas son trifoliadas y lanceoladas. Las flores son hermafroditas, autopolinizadas (posible polinización cruzada por insectos), amarillo-anaranjadas, rojas o púrpuras. Las vainas son planas y anchas, con 3–5 semillas. Las semillas son redondas u ovaladas, de color diverso, y contienen alrededor de 19 % de proteína y 57 % de carbohidratos (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Importancia económica: El guandú es un cultivo de leguminosa de grano importante de los trópicos secos. Las semillas inmaduras y las vainas verdes se consumen como alimento; las semillas maduras se utilizan para preparar dal (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). El guandú posee una alta resistencia a la sequía y un sistema radical profundo, lo que lo hace valioso para regiones áridas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Como cultivo fijador de nitrógeno, mejora la fertilidad del suelo (Marschner, 2012). Principales productores: India, Myanmar, Malaui, Tanzania, Kenia (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
3.7. Tabla resumen de los géneros más importantes de leguminosas
| Género | Subfamilia | Número de especies | Origen | Uso principal | Especies más importantes |
|---|---|---|---|---|---|
| Pisum | Faboideae | 1 (polimórfica) | Mediterráneo, Asia Central | Alimentario (grano, hortaliza), forrajero | P. sativum |
| Vicia | Faboideae | 140–150 | Mediterráneo, Oriente Próximo | Alimentario, forrajero, abono verde | V. faba, V. sativa |
| Lens | Faboideae | 5–7 | Mediterráneo, Asia Sudoccidental | Alimentario (grano) | L. culinaris |
| Cicer | Faboideae | 40 | Asia Sudoccidental | Alimentario (grano) | C. arietinum |
| Phaseolus | Faboideae | 50–60 | Neotrópico (América) | Alimentario (grano, hortaliza) | P. vulgaris, P. lunatus, P. coccineus, P. acutifolius |
| Arachis | Faboideae | 70 | América del Sur | Alimentario (oleaginoso, proteico) | A. hypogaea |
| Glycine | Faboideae | 20 | Asia Oriental | Alimentario (oleaginoso, proteico), forrajero | G. max |
| Medicago | Faboideae | 85 | Asia Sudoccidental | Forrajero | M. sativa |
| Trifolium | Faboideae | 300 | Mediterráneo, Europa | Forrajero | T. repens, T. pratense, T. subterraneum |
| Onobrychis | Faboideae | 130 | Sureste de Europa, Asia Occidental | Forrajero | O. viciifolia |
| Lupinus | Faboideae | 200–600 | Mediterráneo, América | Alimentario, forrajero, abono verde, ornamental | L. albus, L. luteus, L. angustifolius, L. mutabilis |
| Vigna | Faboideae | 100–150 | Asia, África | Alimentario (grano, hortaliza) | V. radiata, V. mungo, V. unguiculata, V. angularis |
| Cajanus | Faboideae | 30 | Asia (India) | Alimentario (grano) | C. cajan |
4. Simbiosis con rizobios: relación entre la proximidad taxonómica y la capacidad de fijación de nitrógeno
En los capítulos anteriores examinamos la sistemática, la filogenia y la importancia económica de los géneros más importantes de leguminosas. Ahora pasaremos a una de las características más sorprendentes y prácticamente significativas de esta familia: la capacidad de fijación simbiótica de nitrógeno. Esta capacidad no solo determina el éxito ecológico de las leguminosas en la naturaleza, sino que las convierte en componentes irremplazables de los agroecosistemas sostenibles. Examinaremos la diversidad de los rizobios, la especificidad de la simbiosis, la evolución de esta capacidad dentro de Fabales y su importancia práctica para la agricultura.
4.1. Características generales de la simbiosis de las leguminosas con rizobios
La simbiosis es la «vida conjunta» de dos o más organismos, a menudo con estructuras especializadas. En sentido amplio, las asociaciones simbióticas incluyen las parasitarias y comensalistas, así como las asociaciones mutualistas (Lambers & Oliveira, 2019). En este capítulo utilizamos el término «simbiosis» en sentido estricto, para designar asociaciones mutualistas entre plantas y microorganismos.
Las leguminosas (Fabaceae) son uno de los pocos grupos de plantas superiores capaces de establecer relaciones simbióticas con bacterias fijadoras de nitrógeno conocidas como rizobios (Lambers & Oliveira, 2019; Marschner, 2012). Estas bacterias son capaces de reducir el nitrógeno molecular atmosférico (N2) a amoniaco (NH3) mediante la enzima nitrogenasa. La planta hospedadora proporciona a las bacterias un sustrato energético (productos de la fotosíntesis) y un ambiente protector (nódulos), y a cambio recibe nitrógeno en forma disponible (Marschner, 2012; Schopfer & Brennicke, 2016).
La capacidad de formar nódulos con rizobios no es universal para todas las leguminosas. Según las estimaciones modernas, solo alrededor del 70 % de las especies de Fabaceae son capaces de formar nódulos (Sprent, 2007; LPWG, 2017). Esta capacidad está distribuida de forma desigual: prácticamente está ausente en las subfamilias basales (Cercidoideae, Detarioideae, Duparquetioideae, Dialioideae) y está ampliamente representada en Caesalpinioideae (especialmente en el clado de las mimosoideas) y Faboideae (LPWG, 2017; Sprent, 2007; Lambers & Oliveira, 2019).
4.2. Rizobios: diversidad taxonómica y clasificación
Los rizobios son un grupo heterogéneo de bacterias fijadoras de nitrógeno capaces de formar nódulos en las raíces de las leguminosas. Inicialmente, todos ellos fueron incluidos en el género Rhizobium (Schopfer & Brennicke, 2016); sin embargo, la taxonomía moderna, basada en datos moleculares y genéticos (análisis de secuencias de ARNr 16S y otros genes), ha mostrado que los rizobios son un grupo polifilético que incluye representantes de varios géneros de las clases Alphaproteobacteria y Betaproteobacteria (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019).
Alfa-rizobios (Alphaproteobacteria)
La mayoría de los rizobios conocidos pertenecen a la clase Alphaproteobacteria. Los géneros más importantes de este grupo (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019):
- Rhizobium: género tipo, incluye especies que forman nódulos en las raíces de leguminosas de las tribus Trifolieae, Vicieae, Phaseoleae, etc. Especies más importantes: R. leguminosarum (con biovares viciae, trifolii, phaseoli), R. etli, R. tropici, R. galegae, R. lupini (Marschner, 2012).
- Bradyrhizobium: bacterias de crecimiento lento que forman nódulos en las raíces de soja (Glycine max), cacahuete (Arachis hypogaea), vigna (Vigna spp.), altramuz (Lupinus spp.) y muchas leguminosas tropicales. Especies más importantes: B. japonicum, B. elkanii, B. diazoefficiens (Marschner, 2012; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- Sinorhizobium (actualmente Ensifer): incluye especies que forman nódulos en alfalfa (Medicago sativa), meliloto (Melilotus), fenogreco (Trigonella), soja (Glycine max) y vigna (Vigna spp.). Especies más importantes: S. meliloti, S. fredii (Marschner, 2012).
- Mesorhizobium: ocupa una posición intermedia en velocidad de crecimiento entre Rhizobium y Bradyrhizobium. Forma nódulos en loto (Lotus), altramuz (Lupinus), astrágalo (Astragalus), leucaena (Leucaena) y arveja (Lathyrus) (Marschner, 2012).
- Azorhizobium: forma nódulos tanto radicales como caulinares en Sesbania rostrata. Es capaz de fijar nitrógeno en estado de vida libre (Marschner, 2012; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- Allorhizobium: género recientemente descrito, cercano a Rhizobium (Marschner, 2012).
- Methylobacterium: bacterias metilotróficas que forman nódulos en Crotalaria (Marschner, 2012).
- Devosia, Ochrobactrum, Phyllobacterium: otros géneros de alfa-rizobios descritos en las últimas décadas (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019).
Beta-rizobios (Betaproteobacteria)
Hace relativamente poco se descubrió que algunas bacterias de la clase Betaproteobacteria también son capaces de formar nódulos en leguminosas. Entre ellas (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019):
- Burkholderia: incluye especies B. caribensis, B. tuberum, B. phymatum, que forman nódulos en Mimosa spp., Cyclopia spp. y otras leguminosas tropicales (Marschner, 2012).
- Cupriavidus (antes Ralstonia): incluye C. taiwanensis, que forma nódulos en Mimosa pudica (Marschner, 2012).
El descubrimiento de los beta-rizobios tuvo una importante relevancia evolutiva: mostró que la capacidad de formar nódulos no es exclusiva de Alphaproteobacteria, sino que fue adquirida mediante transferencia horizontal de genes (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Los genes responsables de la simbiosis (los llamados genes nod y nif) están localizados en plásmidos o en islas genómicas y pueden transferirse entre bacterias de diferentes grupos taxonómicos (Schopfer & Brennicke, 2016; Marschner, 2012).
4.3. Especificidad de la simbiosis: no todas las leguminosas forman nódulos con cualquier rizobio
La simbiosis entre leguminosas y rizobios se caracteriza por una alta especificidad: cada cepa de rizobios es capaz de formar nódulos eficaces solo con un determinado círculo de plantas hospedadoras (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Esta especificidad está determinada por un complejo «diálogo molecular» entre los socios, que incluye el intercambio de señales químicas (Schopfer & Brennicke, 2016; Lambers & Oliveira, 2019).
Bases moleculares de la especificidad
El proceso de reconocimiento de los socios comienza con la liberación por las raíces de las leguminosas de flavonoides, metabolitos secundarios que actúan como quimioatrayentes para los rizobios e inducen la expresión de los genes nod bacterianos (Schopfer & Brennicke, 2016; Lambers & Oliveira, 2019). Diferentes especies de leguminosas liberan diferentes conjuntos de flavonoides, lo que determina la especificidad del reclutamiento de los rizobios (Marschner, 2012).
En respuesta a los flavonoides, los rizobios sintetizan factores Nod, lipoquitooligosacáridos que inducen en la planta hospedadora toda una cascada de respuestas: deformación de los pelos radicales, división de las células del córtex, formación del hilo de infección y, finalmente, formación del nódulo (Schopfer & Brennicke, 2016; Lambers & Oliveira, 2019). La estructura de los factores Nod es especie-específica: precisamente ella determina si una cepa de rizobios podrá formar un nódulo en una planta determinada (Marschner, 2012; Schopfer & Brennicke, 2016).
La especificidad de la simbiosis se manifiesta en varios niveles (Marschner, 2012):
1. Nivel de adhesión: las lectinas de la superficie de los pelos radicales reconocen polisacáridos específicos de la superficie de los rizobios.
2. Nivel de intercambio de señales: los flavonoides del hospedador inducen los genes nod solo en cepas compatibles.
3. Nivel de factores Nod: la estructura de los factores Nod debe corresponder a los receptores de la superficie de las células del hospedador.
4. Nivel del proceso de infección: solo las cepas compatibles son capaces de penetrar en la raíz y formar un nódulo completo.
Ejemplos de especificidad
La especificidad de la simbiosis se ilustra bien con los siguientes ejemplos (Marschner, 2012):
- Rhizobium leguminosarum bv. viciae: forma nódulos solo en especies de Pisum (guisante), Vicia (habas, veza), Lens (lenteja) y Lathyrus (arveja).
- Rhizobium leguminosarum bv. trifolii: forma nódulos solo en especies de Trifolium (trébol).
- Rhizobium leguminosarum bv. phaseoli: forma nódulos solo en especies de Phaseolus (frijol).
- Sinorhizobium meliloti: forma nódulos en Medicago (alfalfa), Melilotus (meliloto) y Trigonella (fenogreco).
- Bradyrhizobium japonicum: forma nódulos en Glycine max (soja).
- Mesorhizobium loti: forma nódulos en Lotus (loto) y algunos otros géneros.
Sin embargo, la especificidad no siempre es absoluta. Algunos rizobios poseen una amplia especificidad: por ejemplo, Rhizobium sp. NGR234 es capaz de formar nódulos en 112 géneros de leguminosas, así como en la no leguminosa Parasponia (Cannabaceae) (Marschner, 2012; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Por otro lado, algunas leguminosas, como Vigna y Phaseolus, se consideran «no selectivas» y pueden formar nódulos con diferentes especies de rizobios (Marschner, 2012).
Plantas no leguminosas que forman nódulos con rizobios
La única planta no leguminosa capaz de formar nódulos con rizobios es Parasponia (Cannabaceae), un árbol tropical del Sudeste Asiático y Australia (Marschner, 2012; Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Lambers & Oliveira, 2019). Este hecho tiene una importante relevancia evolutiva: muestra que la capacidad de simbiosis con rizobios no es estrictamente específica de las leguminosas y puede ser adquirida por otros grupos de plantas (Lambers & Oliveira, 2019).
4.4. Simbiosis actinorrícica
Además de la simbiosis con rizobios, algunas plantas no leguminosas forman nódulos con actinomicetos del género *Frankia (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Este tipo de simbiosis se denomina actinorrícica*. Está extendida entre unas 200 especies de plantas leñosas de ocho familias, principalmente de zonas templadas y subtropicales (Marschner, 2012; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Los géneros más importantes de plantas actinorrícicas (Marschner, 2012; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Alnus (aliso): Betulaceae;
- Casuarina (casuarina): Casuarinaceae;
- Hippophae (espino amarillo): Elaeagnaceae;
- Elaeagnus (eleagno): Elaeagnaceae;
- Myrica (mirica): Myricaceae;
- Ceanothus: Rhamnaceae;
- Purshia: Rosaceae;
- Rubus: Rosaceae;
- Discaria: Rhamnaceae.
Las plantas actinorrícicas desempeñan un papel ecológico importante en los ecosistemas forestales y arbustivos, especialmente en suelos pobres en nitrógeno. Por ejemplo, el aliso (Alnus spp.) es capaz de fijar de 15 a 300 kg N/ha al año, enriqueciendo el suelo con nitrógeno y mejorando su fertilidad (Marschner, 2012).
4.5. Evolución de la simbiosis con bacterias fijadoras de nitrógeno
La evolución de la simbiosis entre plantas y bacterias fijadoras de nitrógeno es uno de los problemas clave de la biología evolutiva moderna. La capacidad de formar nódulos surgió dentro del clado Fabids (fábidas) y, al parecer, tiene un origen evolutivo único con múltiples pérdidas posteriores (Soltis et al., 1995; Doyle, 2011, 2012; LPWG, 2017).
Predisposición genética a la simbiosis
Según las ideas modernas, la predisposición a la formación de nódulos (predisposition for nodulation) surgió una sola vez en la evolución de Fabids, un gran clado dentro de las rósidas que incluye los órdenes Fabales, Rosales, Cucurbitales y Fagales (Soltis et al., 1995; Doyle, 2011, 2012). Dentro de este clado, la capacidad de simbiosis con bacterias fijadoras de nitrógeno (rizobios o Frankia) está presente en cuatro órdenes: Fabales (leguminosas), Rosales (algunos géneros), Cucurbitales (algunos géneros) y Fagales (algunos géneros) (Soltis et al., 1995; Doyle, 2011; Lambers & Oliveira, 2019).
Esta hipótesis se confirma mediante datos filogenéticos y genómica comparada: los genes necesarios para la simbiosis (los llamados genes sym) son homólogos en todas las plantas noduladas y probablemente fueron heredados de un antepasado común (Doyle, 2011, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Además, muchos de estos genes participan también en la simbiosis micorrícica arbuscular (AM), que surgió mucho antes, hace unos 450 millones de años, cuando las plantas colonizaron la tierra firme (Lambers & Oliveira, 2019; Martin et al., 2017). Esto significa que la simbiosis con rizobios evolucionó a partir de una simbiosis micorrícica más antigua mediante la «reconversión» de rutas de señalización existentes (Lambers & Oliveira, 2019; Schopfer & Brennicke, 2016).
Múltiples pérdidas y adquisiciones repetidas
A pesar del origen único de la predisposición a la simbiosis, dentro de Fabaceae la capacidad de formar nódulos fue perdida repetidamente en diferentes linajes (Doyle, 2011, 2012; LPWG, 2017; Lambers & Oliveira, 2019). Por ejemplo, en las subfamilias Cercidoideae, Detarioideae, Duparquetioideae y Dialioideae los nódulos están completamente ausentes. En Caesalpinioideae y Faboideae los nódulos están presentes en unos géneros y ausentes en otros (LPWG, 2017; Sprent, 2007).
El análisis filogenético muestra que dentro de Fabaceae la capacidad de formar nódulos surgió múltiples veces o, lo que es más probable, fue heredada de un antepasado común con múltiples pérdidas posteriores (Doyle, 2011, 2012; Van Velzen et al., 2019). Según las estimaciones, dentro de la familia ocurrieron de 2 a 5 adquisiciones independientes de la capacidad de simbiosis con rizobios y alrededor de 9 adquisiciones independientes de la capacidad de simbiosis actinorrícica (Geurts et al., 2016; Lambers & Oliveira, 2019). Una hipótesis alternativa supone un origen único con múltiples pérdidas relacionadas con cambios en la concentración de CO2 atmosférico (Van Velzen et al., 2019).
Ventajas y limitaciones evolutivas de la simbiosis
La simbiosis con bacterias fijadoras de nitrógeno proporciona a las plantas una enorme ventaja en condiciones de déficit de nitrógeno, permitiéndoles ocupar nichos ecológicos inaccesibles para plantas no simbióticas (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Sin embargo, la simbiosis también tiene costos energéticos: para fijar 1 mol de N2 se requieren 16 moles de ATP, lo que convierte este proceso en uno de los más intensivos en energía de la biología (Schopfer & Brennicke, 2016; Marschner, 2012). La planta se ve obligada a dirigir una parte significativa de los productos de la fotosíntesis (hasta el 20 % o más) al mantenimiento de la simbiosis, lo que reduce su competitividad en condiciones de nutrición nitrogenada suficiente (Lambers & Oliveira, 2019; Kaschuk et al., 2009).
Precisamente por eso las leguminosas han desarrollado mecanismos de regulación de la simbiosis en función de la disponibilidad de nitrógeno en el suelo: con un alto contenido de nitrógeno mineral se suprimen la formación de nódulos y la fijación de nitrógeno (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Esta regulación se produce a nivel de la expresión génica y de la actividad enzimática y permite a la planta evitar costos energéticos innecesarios (Schopfer & Brennicke, 2016).
4.6. Importancia práctica de la fijación simbiótica de nitrógeno
La fijación simbiótica de nitrógeno tiene una enorme importancia práctica para la agricultura sostenible. Permite:
1. Reducir la dependencia de los fertilizantes nitrogenados: los cultivos de leguminosas son capaces de satisfacer sus necesidades de nitrógeno mediante la simbiosis, lo que reduce los costos de fertilizantes minerales y disminuye la contaminación ambiental (Connor et al., 2011; Marschner, 2012).
2. Enriquecer el suelo con nitrógeno: después de la cosecha de las leguminosas, una parte significativa del nitrógeno fijado permanece en el suelo formando parte de los restos radicales y de los residuos de cosecha, enriqueciéndolo con nitrógeno para los cultivos siguientes (Connor et al., 2011; Marschner, 2012).
3. Utilizar leguminosas como abonos verdes: el abono verde (sideración) es una práctica importante de la agricultura ecológica que permite enriquecer el suelo con materia orgánica y nitrógeno sin aplicar fertilizantes minerales (Connor et al., 2011).
4. Incluir leguminosas en las rotaciones: las rotaciones científicamente fundamentadas con participación de leguminosas aumentan el rendimiento de los cultivos siguientes en un 30–35 % o más (Connor et al., 2011; Khan et al., 2019).
Abonos verdes y enmienda verde
Los abonos verdes son plantas cultivadas especialmente para ser incorporadas al suelo con el fin de enriquecerlo con materia orgánica y nitrógeno. Los abonos verdes de leguminosas son especialmente valiosos por su capacidad de fijar nitrógeno (Connor et al., 2011).
Los abonos verdes de leguminosas más importantes (Connor et al., 2011; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Altramuz (Lupinus spp.): fija hasta 150–170 kg N/ha, crece bien en suelos pobres y ácidos;
- Veza (Vicia spp.): fija hasta 100–200 kg N/ha, se utiliza en mezclas con gramíneas;
- Meliloto (Melilotus spp.): fija hasta 200 kg N/ha, resistente a la sequía;
- Trébol (Trifolium spp.): fija hasta 250 kg N/ha, se utiliza en mezclas para pastos;
- Serradela (Ornithopus sativus): fija hasta 100 kg N/ha, crece bien en suelos arenosos;
- Guisante (Pisum sativum): fija hasta 86 kg N/ha, se utiliza como abono verde en mezclas;
- Frijol (Phaseolus spp.): fija hasta 50 kg N/ha, se utiliza en los trópicos.
La sideración mejora la estructura del suelo, aumenta el contenido de materia orgánica, suprime las malas hierbas, reduce la erosión y favorece la conservación de la humedad (Connor et al., 2011).
Rotaciones con participación de leguminosas
La inclusión de leguminosas en las rotaciones es uno de los principios fundamentales de la agricultura sostenible. Ejemplos clásicos (Connor et al., 2011):
- Rotación de cuatro campos de Norfolk (Reino Unido, siglo XVIII): trigo → nabo → cebada → trébol. El trébol desempeñaba el papel de fijador de nitrógeno y cultivo forrajero.
- Rotación maíz-soja (EE. UU., Medio Oeste): maíz → soja → maíz. La soja fija nitrógeno y aumenta el rendimiento del maíz en un 10–20 %.
- Rotaciones arroz-leguminosas (Asia): arroz → mungo/urd → arroz. Las leguminosas fijan nitrógeno y mejoran la fertilidad del suelo.
Las investigaciones científicas muestran que el rendimiento de los cereales después de predecesores leguminosos aumenta en un 30–35 % en comparación con el monocultivo, y la necesidad de fertilizantes nitrogenados se reduce en 40–50 kg N/ha (Connor et al., 2011; Khan et al., 2019).
Inoculación de semillas con rizobios
Para aumentar la eficacia de la simbiosis se utiliza la inoculación de semillas: el tratamiento de las semillas antes de la siembra con cepas cultivadas de rizobios (Marschner, 2012; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Esto es especialmente importante al sembrar leguminosas en campos donde antes no se cultivaban los cultivos correspondientes, o donde las cepas locales de rizobios no son eficaces.
La inoculación puede aumentar el rendimiento de las leguminosas en un 10–50 % y multiplicar por 2–3 la cantidad de nitrógeno fijado (Marschner, 2012). Sin embargo, la eficacia de la inoculación depende de muchos factores: la competitividad de la cepa introducida, la acidez del suelo, el contenido de nitrógeno mineral, la temperatura y la humedad (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019).
Importancia global de la fijación biológica de nitrógeno
A escala global, la fijación biológica de nitrógeno aporta alrededor del 60 % de todo el nitrógeno que entra en los ecosistemas terrestres (Marschner, 2012). La fijación simbiótica por leguminosas constituye alrededor del 50 % de esa cantidad: aproximadamente 40–70 millones de toneladas de nitrógeno al año (Herridge et al., 2008; Marschner, 2012). Para comparar: la producción industrial de fertilizantes nitrogenados (proceso Haber-Bosch) aporta alrededor de 100 millones de toneladas de nitrógeno al año (Connor et al., 2011; Marschner, 2012).
Así, la fijación simbiótica de nitrógeno por las leguminosas es un recurso renovable de nitrógeno que puede reducir la dependencia de la agricultura de los combustibles fósiles y disminuir el impacto negativo sobre el medio ambiente.
4.7. Relación entre la proximidad taxonómica y la capacidad de fijación de nitrógeno
La capacidad de formar nódulos y de fijar nitrógeno correlaciona con la posición taxonómica de las leguminosas (LPWG, 2017; Sprent, 2007; Doyle, 2011):
- Subfamilias basales (Cercidoideae, Detarioideae, Duparquetioideae, Dialioideae): no forman nódulos (LPWG, 2017).
- Caesalpinioideae (en el nuevo sentido, incluido el clado de las mimosoideas): varía: algunos géneros forman nódulos (especialmente en el clado de las mimosoideas), otros no (LPWG, 2017; Sprent, 2007).
- Faboideae: la mayoría de los géneros forman nódulos, aunque hay excepciones (por ejemplo, algunas especies de Lupinus, Astragalus pueden no formar nódulos en determinadas condiciones) (LPWG, 2017; Sprent, 2007).
Esta correlación refleja la historia evolutiva de la familia: la capacidad de simbiosis con rizobios, al parecer, surgió en el antepasado común de Caesalpinioideae + Faboideae, pero se perdió en algunos linajes (Doyle, 2011, 2012; LPWG, 2017).
5. Parientes silvestres como donantes de genes de resistencia
En los capítulos anteriores examinamos la sistemática, la filogenia, la importancia económica y la fijación simbiótica de nitrógeno de las leguminosas. Ahora pasaremos a uno de los problemas más actuales de la selección moderna: el uso de parientes silvestres de las leguminosas cultivadas como fuentes de genes de resistencia a enfermedades, plagas y estreses abióticos. Este tema tiene una importancia estratégica para la seguridad alimentaria y la agricultura sostenible, ya que la diversidad genética de las variedades cultivadas suele ser limitada, mientras que los parientes silvestres conservan adaptaciones perdidas durante la domesticación (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
5.1. Concepto de acervos genéticos (GP1–GP3)
Para el uso eficaz de los recursos genéticos en la selección se aplica el concepto de acervos genéticos (gene pools), propuesto por Harlan y de Wet (1971) y desarrollado en los trabajos sobre recursos fitogenéticos (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Según este concepto, los recursos genéticos de una especie se dividen en tres acervos principales:
- Acervo genético primario (GP1, primary gene pool): incluye las variedades cultivadas y las formas silvestres de la misma especie, que se cruzan fácilmente con las plantas cultivadas, dan descendencia fértil y no requieren métodos especiales para la transferencia de genes. Los genes del GP1 se introgresan fácilmente en las variedades cultivadas mediante métodos de selección tradicional (Prohens & Nuez, 2008).
- Acervo genético secundario (GP2, secondary gene pool): incluye especies cercanamente emparentadas, cuyo cruzamiento es posible pero conlleva dificultades: esterilidad parcial de los híbridos, necesidad de cultivo de embriones, alteraciones de la meiosis. La transferencia de genes del GP2 requiere métodos especiales (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- Acervo genético terciario (GP3, tertiary gene pool): incluye especies más distantas, cuyo cruzamiento solo es posible con métodos especiales (cultivo de embriones, hibridación somática, transformación genética). Los híbridos suelen ser estériles o inviables (Prohens & Nuez, 2008).
Esta clasificación permite a los fitomejoradores evaluar con qué facilidad puede transferirse un gen útil de un pariente silvestre a una variedad cultivada.
5.2. Soja: Glycine soja — antepasado silvestre
Posición sistemática: Glycine max (L.) Merr., la soja cultivada, pertenece al subgénero Soja del género Glycine Willd. (subfamilia Faboideae, tribu Phaseoleae, subtribu Glycininae) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008). El antepasado silvestre de la soja es Glycine soja Siebold & Zucc., una anual que crece en Asia Oriental (China, Corea, Japón, Rusia: Extremo Oriente) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Acervos genéticos de la soja:
- GP1: G. max (soja cultivada) y G. soja (soja silvestre): se cruzan libremente y dan descendencia fértil (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- GP2: especies del subgénero Glycine (por ejemplo, G. canescens, G. tomentella): el cruzamiento es posible, pero con dificultades (Prohens & Nuez, 2008).
- GP3: especies más distantas del género Glycine: el cruzamiento requiere métodos especiales (Prohens & Nuez, 2008).
Importancia de G. soja para la selección:
Glycine soja posee una serie de caracteres valiosos perdidos durante la domesticación (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Resistencia a enfermedades: G. soja muestra resistencia al nematodo del quiste de la soja (Heterodera glycines), al mildiu velloso (Peronospora manshurica), a la septoriosis (Septoria glycines), al virus del mosaico de la soja (SMV) y otros patógenos (Prohens & Nuez, 2008).
- Resistencia a plagas: G. soja es resistente a la polilla de la soja (Leguminivora glycinivorella), a la araña roja (Tetranychus urticae) y otras plagas (Prohens & Nuez, 2008).
- Resistencia a estreses abióticos: G. soja es más resistente a la sequía, la salinidad y las bajas temperaturas que la soja cultivada (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
- Calidad de la semilla: G. soja tiene un mayor contenido de proteína (hasta 50 %) y una composición de aminoácidos más favorable que muchas variedades cultivadas (Prohens & Nuez, 2008).
Los programas de mejoramiento de soja utilizan activamente G. soja para la introgresión de genes de resistencia a nematodos, enfermedades y estreses abióticos (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Por ejemplo, los genes de resistencia al nematodo del quiste de la soja (SCN) fueron transferidos de G. soja a variedades cultivadas y se utilizan ampliamente en la selección (Prohens & Nuez, 2008).
5.3. Frijol: especies silvestres de Phaseolus
Posición sistemática: El género Phaseolus L. (subfamilia Faboideae, tribu Phaseoleae) incluye alrededor de 50–60 especies, distribuidas en el Neotrópico (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Especies cultivadas: P. vulgaris, P. lunatus, P. coccineus, P. acutifolius, P. polyanthus (Prohens & Nuez, 2008).
Acervos genéticos del frijol:
- GP1: P. vulgaris (frijol cultivado) y sus formas silvestres P. vulgaris var. aborigineus: se cruzan libremente (Prohens & Nuez, 2008; Gepts, 1998).
- GP2: P. coccineus, P. costaricensis, P. polyanthus: el cruzamiento es posible, pero los híbridos son parcialmente estériles (Prohens & Nuez, 2008; Singh, 2001).
- GP3: P. acutifolius (tepari), P. parvifolius: el cruzamiento requiere cultivo de embriones (Prohens & Nuez, 2008; Singh, 2001).
Importancia de las especies silvestres de Phaseolus para la selección:
Las especies silvestres de Phaseolus poseen caracteres valiosos que se utilizan activamente en la selección (Prohens & Nuez, 2008; Singh, 2001):
- P. vulgaris var. aborigineus (frijol silvestre): resistencia a la antracnosis (Colletotrichum lindemuthianum), a la mancha bacteriana común (Xanthomonas axonopodis pv. phaseoli), a la marchitez por Fusarium (Fusarium oxysporum f. sp. phaseoli) y al virus del mosaico común del frijol (BCMV) (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
- P. acutifolius (tepari): resistencia única a la sequía y a las altas temperaturas, resistencia a la mancha bacteriana común, al virus del mosaico dorado del frijol (BGMV) y a la marchitez por Fusarium (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Los genes de resistencia a la mancha bacteriana de P. acutifolius se han transferido con éxito a P. vulgaris (Singh, 2001).
- P. coccineus (frijol escarlata): resistencia a la antracnosis, a la marchitez por Fusarium, al virus del mosaico común y también al frío (Prohens & Nuez, 2008).
- P. lunatus (frijol de Lima): resistencia a la sequía, a las altas temperaturas y a enfermedades bacterianas y fúngicas (Prohens & Nuez, 2008).
Los programas de mejoramiento de frijol utilizan activamente especies silvestres para la introgresión de genes de resistencia a enfermedades, plagas y estreses abióticos (Prohens & Nuez, 2008; Singh, 2001; Pessarakli, 2020). Por ejemplo, los genes de resistencia a la antracnosis (Co-1 – Co-10) fueron transferidos de formas silvestres de P. vulgaris y P. coccineus (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
5.4. Guisante: Pisum sativum subsp. elatius
Posición sistemática: Pisum sativum L. (subfamilia Faboideae, tribu Fabeae) es la única especie cultivada del género Pisum L. (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008). Las formas silvestres del guisante pertenecen a las subespecies P. sativum subsp. elatius (Bieb.) Asch. & Graebn., P. sativum subsp. syriacum (Boiss. & Noë) Berger y P. sativum subsp. asiaticum Govorov (Prohens & Nuez, 2008).
Acervos genéticos del guisante:
- GP1: P. sativum subsp. sativum (guisante cultivado) y P. sativum subsp. elatius, P. sativum subsp. syriacum: se cruzan libremente y dan descendencia fértil (Prohens & Nuez, 2008).
- GP2: P. fulvum Sibth. & Sm.: el cruzamiento es posible, pero con dificultades (Prohens & Nuez, 2008).
- GP3: otras especies del género Pisum: el cruzamiento requiere métodos especiales (Prohens & Nuez, 2008).
Importancia de P. sativum subsp. elatius para la selección:
El guisante silvestre P. sativum subsp. elatius posee caracteres valiosos (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020):
- Resistencia a enfermedades: resistencia al mildiu velloso (Peronospora pisi), a la marchitez por Fusarium (Fusarium oxysporum f. sp. pisi), a la ascoquitosis (Ascochyta pisi, A. pinodes), a la roya (Uromyces pisi) y al chancro bacteriano (Pseudomonas syringae pv. pisi) (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
- Resistencia a plagas: resistencia al pulgón del guisante (Acyrthosiphon pisum), al gorgojo del guisante (Bruchus pisorum) y a la polilla del guisante (Cydia nigricana) (Prohens & Nuez, 2008).
- Resistencia a estreses abióticos: resistencia a la sequía, a las altas temperaturas y a la salinidad (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
Los genes de resistencia a la marchitez por Fusarium (Fw, Fwf), al mildiu velloso (er1, er2, Er3) y a la ascoquitosis (Rap2, Rmp1–Rmp4) han sido identificados en formas silvestres de guisante y se utilizan activamente en la selección (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
5.5. Garbanzo: Cicer reticulatum
Posición sistemática: Cicer arietinum L. (subfamilia Faboideae, tribu Cicereae) es la única especie cultivada del género Cicer L. (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008). El antepasado silvestre del garbanzo es Cicer reticulatum Ladizinsky, una anual que crece en el sureste de Turquía (Prohens & Nuez, 2008).
Acervos genéticos del garbanzo:
- GP1: C. arietinum (garbanzo cultivado) y C. reticulatum (garbanzo silvestre): se cruzan libremente y dan descendencia fértil (Prohens & Nuez, 2008).
- GP2: C. echinospermum P.H. Davis: el cruzamiento es posible, pero con dificultades (Prohens & Nuez, 2008).
- GP3: otras especies del género Cicer (alrededor de 40 especies): el cruzamiento requiere métodos especiales (Prohens & Nuez, 2008).
Importancia de C. reticulatum para la selección:
Cicer reticulatum posee caracteres valiosos (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020):
- Resistencia a enfermedades: resistencia a la ascoquitosis (Ascochyta rabiei), a la marchitez por Fusarium (Fusarium oxysporum f. sp. ciceris), a las podredumbres radicales (Rhizoctonia solani, Pythium spp.) y a la botritis (Botrytis cinerea) (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
- Resistencia a plagas: resistencia a la oruga del algodón (Helicoverpa armigera), a la mosca del garbanzo (Liriomyza cicerina) y al gorgojo del garbanzo (Callosobruchus chinensis) (Prohens & Nuez, 2008).
- Resistencia a estreses abióticos: resistencia a la sequía, a las altas temperaturas y a la salinidad (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
Los genes de resistencia a la ascoquitosis, a la marchitez por Fusarium y a otras enfermedades han sido identificados en C. reticulatum y se utilizan activamente en la selección del garbanzo (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
5.6. Alfalfa: complejo Medicago sativa
Posición sistemática: Medicago sativa L. (subfamilia Faboideae, tribu Trifolieae) es un cultivo forrajero perenne que incluye varias subespecies: M. sativa subsp. sativa (alfalfa común), M. sativa subsp. falcata (alfalfa falcada), M. sativa subsp. glomerata (alfalfa glomerada), M. sativa subsp. varia (alfalfa variable) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008).
Acervos genéticos de la alfalfa:
- GP1: M. sativa subsp. sativa, M. sativa subsp. falcata, M. sativa subsp. glomerata, M. sativa subsp. varia: se cruzan libremente y dan descendencia fértil (Prohens & Nuez, 2008).
- GP2: M. coerulea Less. ex Ledeb., M. glutinosa M.Bieb., M. prostrata Jacq.: el cruzamiento es posible, pero con dificultades (Prohens & Nuez, 2008).
- GP3: otras especies del género Medicago (alrededor de 85 especies): el cruzamiento requiere métodos especiales (Prohens & Nuez, 2008).
Importancia de las especies silvestres de Medicago para la selección:
Las especies silvestres de Medicago poseen caracteres valiosos (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020):
- Resistencia a enfermedades: resistencia a la marchitez por Fusarium (Fusarium oxysporum f. sp. medicaginis), a la marchitez por Verticillium (Verticillium albo-atrum), a las podredumbres radicales (Phytophthora megasperma, Pythium spp.), a la antracnosis (Colletotrichum trifolii) y a la mancha parda (Pseudopeziza medicaginis) (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
- Resistencia a plagas: resistencia al gorgojo de la alfalfa (Hypera postica), al pulgón de la alfalfa (Acyrthosiphon pisum), a la chinche de la alfalfa (Lygus spp.) y a los nematodos (Meloidogyne spp., Pratylenchus spp.) (Prohens & Nuez, 2008).
- Resistencia a estreses abióticos: resistencia a la sequía, a la salinidad, a las bajas temperaturas y a la acidez del suelo (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
Los genes de resistencia a la marchitez por Fusarium, a la verticilosis, a la antracnosis y a los nematodos han sido identificados en especies silvestres de Medicago y se utilizan activamente en la selección de alfalfa (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
5.7. Acervos genéticos GP1–GP3 y su uso en la selección
El concepto de acervos genéticos (GP1–GP3) tiene una importante importancia práctica para la selección de leguminosas (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
GP1: el acervo más accesible para la selección. Los genes del GP1 pueden transferirse mediante métodos de selección tradicional (hibridación, selección). Ejemplos: uso de la soja silvestre G. soja para la introgresión de genes de resistencia a nematodos en la soja cultivada; uso de formas silvestres de P. vulgaris para la introgresión de genes de resistencia a la antracnosis (Prohens & Nuez, 2008; Singh, 2001).
GP2: requiere métodos especiales para superar las barreras de cruzamiento: cultivo de embriones, cultivo de ovarios, uso de cruzamientos puente. Ejemplos: uso de P. coccineus para transferir genes de resistencia al frío a P. vulgaris; uso de C. echinospermum para transferir genes de resistencia a la ascoquitosis al garbanzo (Prohens & Nuez, 2008).
GP3: el acervo más difícil para la selección. Requiere la aplicación de métodos de transformación genética, hibridación somática o cultivo de embriones. Ejemplos: uso de P. acutifolius para transferir genes de resistencia a la mancha bacteriana a P. vulgaris (Singh, 2001); uso de especies distantas de Medicago para transferir genes de resistencia a la sequía (Prohens & Nuez, 2008).
5.8. Estrategias de uso de parientes silvestres en la selección
Las estrategias modernas de uso de parientes silvestres en la selección de leguminosas incluyen (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020):
1. Introgresión de genes de resistencia: transferencia de genes de resistencia a enfermedades, plagas y estreses abióticos de especies silvestres a variedades cultivadas mediante hibridación, retrocruzamientos y selección.
2. Piramidación de genes: combinación en un mismo genotipo de varios genes de resistencia a diferentes razas de patógenos para crear resistencia duradera (durable).
3. Creación de variedades sintéticas: uso de especies silvestres para crear poblaciones sintéticas con una amplia base genética.
4. Selección asistida por marcadores (MAS): uso de marcadores moleculares ligados a genes de resistencia para acelerar el proceso de selección y aumentar su eficacia (Pessarakli, 2020; Hollingsworth et al., 1999).
5. Selección genómica: uso de datos de genoma completo para predecir el valor selectivo de los genotipos y acelerar el proceso de selección (Pessarakli, 2020).
6. Transformación genética: transferencia directa de genes de resistencia de especies silvestres a variedades cultivadas mediante ingeniería genética (Prohens & Nuez, 2008).
5.9. Problemas y limitaciones del uso de parientes silvestres
El uso de parientes silvestres en la selección conlleva una serie de problemas y limitaciones (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020):
1. Barreras de cruzamiento: dificultades de hibridación entre especies cultivadas y silvestres, esterilidad parcial o total de los híbridos.
2. Ligamiento de caracteres indeseables: los genes de resistencia pueden estar ligados a caracteres indeseables (semillas pequeñas, dehiscencia de vainas, bajo rendimiento), lo que requiere retrocruzamientos prolongados para eliminarlos.
3. Variabilidad genética de los patógenos: la alta variabilidad de los patógenos puede superar la resistencia transferida de especies silvestres.
4. Costos energéticos: la resistencia puede estar asociada a costos energéticos que reducen el rendimiento en ausencia del patógeno.
5. Limitación de los recursos genéticos: muchos parientes silvestres están amenazados de extinción debido a la destrucción de sus hábitats, lo que exige su conservación ex situ e in situ.
6. Uso práctico de la sistemática
En los capítulos anteriores examinamos los fundamentos teóricos de la sistemática y la filogenia de las leguminosas, su importancia económica, la fijación simbiótica de nitrógeno y el uso de parientes silvestres en la selección. Ahora pasaremos a los aspectos prácticos de la aplicación de la sistemática de las leguminosas en la agrosfera. Analizaremos la identificación de especies y variedades, los objetos de cuarentena, la selección para resistencia a enfermedades y plagas, la evaluación de las cualidades forrajeras y alimentarias, así como el problema de las leguminosas arvenses y los métodos de control.
6.1. Identificación de especies y variedades
La identificación precisa de especies y variedades de leguminosas tiene una importancia fundamental para la producción de semillas, la cuarentena vegetal, la selección, la evaluación de la calidad de la producción y la investigación científica (Sharma, 2009; Judd et al., 2018). Los errores de identificación pueden provocar graves pérdidas económicas, la propagación de enfermedades y plagas, y la disminución del rendimiento y la calidad de la producción.
Métodos morfológicos de identificación
La identificación tradicional de leguminosas se basa en caracteres morfológicos que incluyen (Sharma, 2009; Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Nonnecke, 1989):
- Caracteres de los órganos vegetativos: forma y tamaño de las hojas, tipo de filotaxia (alterna, opuesta), forma y borde del limbo, presencia y tipo de pubescencia, forma y color del tallo, tipo de sistema radical.
- Caracteres de los órganos reproductivos: estructura de la flor (simetría, número y disposición de los pétalos, estructura del cáliz y la corola), tipo de inflorescencia (racimo, capítulo, espiga, panícula), color y tamaño de las flores.
- Caracteres de frutos y semillas: forma, tamaño y color de las vainas, número de semillas por vaina, tipo de dehiscencia de la vaina, forma, tamaño y color de las semillas, carácter del hilo (hilum), presencia o ausencia de pleurograma, arilo, alas.
- Caracteres de las plántulas: tipo de germinación (hipogea o epigea), forma y color de los cotiledones, forma y pubescencia del hipocótilo y del epicótilo.
Para la identificación de especies y variedades de leguminosas se han desarrollado claves especiales que permiten determinar secuencialmente, paso a paso, la pertenencia de una planta a un taxón determinado (Sharma, 2009; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Por ejemplo, para determinar las especies del género Phaseolus se utiliza una clave basada en caracteres de la flor, las hojas, los frutos y las semillas (Nonnecke, 1989; Prohens & Nuez, 2008).
Métodos bioquímicos y moleculares de identificación
La sistemática moderna utiliza cada vez más métodos bioquímicos y moleculares para la identificación de especies y variedades de leguminosas, especialmente en los casos en que los caracteres morfológicos son insuficientemente distinguibles o están influidos por el ambiente (Hollingsworth et al., 1999; Pessarakli, 2020).
Marcadores proteicos: La electroforesis de proteínas de reserva de las semillas (globulinas, albúminas) se utiliza ampliamente para la identificación de variedades de leguminosas. Por ejemplo, para la soja se han desarrollado métodos de análisis electroforético de proteínas que permiten distinguir variedades y líneas (Hollingsworth et al., 1999). Para el frijol se utiliza el análisis de la proteína de reserva faseolina, que tiene varias variantes electroforéticas correlacionadas con el origen de la variedad (Prohens & Nuez, 2008; Gepts, 1998). Para el guisante se emplea el análisis de legumina y vicilina, proteínas de reserva de las semillas (Hollingsworth et al., 1999).
Marcadores isoenzimáticos: El análisis de isoenzimas (formas moleculares múltiples de enzimas) se utiliza para evaluar la diversidad genética y la identificación de variedades de leguminosas. Por ejemplo, para la alfalfa se han desarrollado sistemas isoenzimáticos que permiten distinguir variedades e híbridos (Hollingsworth et al., 1999).
Marcadores de ADN: Los marcadores moleculares basados en ADN proporcionan la identificación más precisa y fiable de especies y variedades de leguminosas. Los principales tipos de marcadores de ADN utilizados para estos fines (Pessarakli, 2020; Hollingsworth et al., 1999):
- RAPD (Random Amplified Polymorphic DNA): ADN polimórfico amplificado aleatoriamente. Método simple y económico, pero con reproducibilidad limitada.
- AFLP (Amplified Fragment Length Polymorphism): polimorfismo de longitud de fragmentos amplificados. Método altamente sensible que permite detectar numerosos loci polimórficos.
- SSR (Simple Sequence Repeats): microsatélites. Marcadores codominantes altamente polimórficos, ampliamente utilizados para la identificación de variedades y la evaluación de la diversidad genética.
- SNP (Single Nucleotide Polymorphism): polimorfismo de nucleótido único. El tipo de marcador más moderno, que permite realizar análisis de alto rendimiento.
- SCAR (Sequence Characterized Amplified Region): regiones amplificadas secuenciadas. Se desarrollan a partir de marcadores RAPD y garantizan una alta reproducibilidad.
Para las leguminosas se han desarrollado conjuntos de marcadores SSR y SNP que permiten identificar variedades de soja, frijol, guisante, garbanzo, alfalfa y otros cultivos (Pessarakli, 2020; Hollingsworth et al., 1999). Estos marcadores se utilizan para:
- Identificación de variedades y líneas;
- Evaluación de la diversidad genética y la estructura de poblaciones;
- Clasificación de semillas y control de la calidad del material de siembra;
- Selección asistida por marcadores (MAS);
- Fingerprinting de variedades para la protección de los derechos de los fitomejoradores.
Identificación de subfamilias y géneros
Para la identificación de subfamilias y géneros de leguminosas se utilizan claves basadas en caracteres morfológicos (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). Como discutimos en el capítulo 2, los principales caracteres diagnósticos son:
- Tipo de hojas: bipinnadas (Caesalpinioideae), pinnadas, trifoliadas, palmeadas, unifolioladas (Faboideae, Detarioideae, Cercidoideae, Dialioideae).
- Tipo de fruto: legumbre, legumbre articulada (lomentum), legumbre alada (craspedium), sámara, drupa (LPWG, 2017).
- Estructura de la flor: simetría, estivación de los pétalos, número y concrescencia de los estambres (Judd et al., 2018).
- Presencia o ausencia de pleurograma en las semillas (LPWG, 2017).
- Presencia o ausencia de nódulos radicales (LPWG, 2017).
Para la identificación de géneros dentro de las subfamilias se utilizan caracteres adicionales: forma y pubescencia de las hojas, estructura de las inflorescencias, forma y color de las flores, número y disposición de los estambres, forma y pubescencia de los frutos, forma y color de las semillas (Sharma, 2009; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
6.2. Objetos de cuarentena entre las leguminosas
La cuarentena vegetal es un sistema de medidas destinadas a prevenir la introducción y propagación de plagas, enfermedades y plantas arvenses peligrosas (Pessarakli, 2020). Las leguminosas, como cultivos agrícolas importantes, son objeto de vigilancia cuarentenaria. Muchos patógenos y plagas de las leguminosas están incluidos en listas de cuarentena nacionales e internacionales (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
Enfermedades cuarentenarias de las leguminosas
Entre las enfermedades cuarentenarias más peligrosas de las leguminosas cabe señalar (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008):
- Ascoquitosis del garbanzo (Ascochyta rabiei): enfermedad fúngica peligrosa que causa pérdidas significativas de la cosecha de garbanzo. Incluida en las listas de cuarentena de muchos países (Pessarakli, 2020).
- Marchitez por Fusarium (Fusarium oxysporum f. sp. ciceris, F. oxysporum f. sp. pisi, F. oxysporum f. sp. phaseoli): patógenos del suelo peligrosos que causan la marchitez del garbanzo, el guisante y el frijol (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
- Chancro bacteriano (Pseudomonas syringae pv. pisi, P. syringae pv. phaseolicola): enfermedades bacterianas del guisante y el frijol, incluidas en las listas de cuarentena (Prohens & Nuez, 2008).
- Virus del mosaico común del frijol (BCMV) y virus del mosaico necrótico del frijol (BCMNV): enfermedades virales peligrosas transmitidas por semillas y pulgones (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
- Virus del mosaico dorado del frijol (BGMV): enfermedad viral peligrosa transmitida por la mosca blanca (Pessarakli, 2020).
- Nematodo del quiste de la soja (Heterodera glycines): plaga cuarentenaria peligrosa de la soja (Pessarakli, 2020).
- Gorgojo del guisante (Bruchus pisorum) y gorgojo del frijol (Acanthoscelides obtectus): plagas cuarentenarias peligrosas de las semillas de leguminosas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Pessarakli, 2020).
Plagas cuarentenarias de las leguminosas
Entre las plagas cuarentenarias de las leguminosas más peligrosas (Pessarakli, 2020; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Gorgojo del guisante (Bruchus pisorum): escarabajo que daña las semillas de guisante. Las larvas se desarrollan dentro de las semillas, reduciendo su viabilidad y su valor alimentario.
- Gorgojo del frijol (Acanthoscelides obtectus): escarabajo que daña las semillas de frijol. Puede destruir hasta el 100 % de las reservas de semillas.
- Gorgojo de cuatro manchas (Callosobruchus maculatus): plaga peligrosa de la vigna, el mungo, el garbanzo y otras leguminosas de grano.
- Oruga del algodón (Helicoverpa armigera): plaga polífaga que daña las vainas de garbanzo, guisante y soja.
- Polilla de la soja (Leguminivora glycinivorella): plaga peligrosa de la soja.
- Gorgojo de la alfalfa (Hypera postica): plaga peligrosa de la alfalfa y el trébol.
- Gorgojos de los nódulos (Sitona spp.): escarabajos que dañan las hojas y los nódulos de las leguminosas.
Leguminosas arvenses cuarentenarias
Algunas leguminosas son malas hierbas cuarentenarias peligrosas (Pessarakli, 2020). Por ejemplo:
- Cuscuta (Cuscuta spp.): planta parásita que ataca muchos cultivos, incluidas las leguminosas. Incluida en las listas de cuarentena de muchos países.
- Cardo ruso (Acroptilon repens): mala hierba perenne de raíz pivotante que infesta los cultivos de leguminosas.
- Ambrosía (Ambrosia artemisiifolia): mala hierba cuarentenaria que provoca alergias en las personas.
Medidas de control cuarentenario
Para prevenir la introducción y propagación de objetos de cuarentena se aplican las siguientes medidas (Pessarakli, 2020):
- Inspección cuarentenaria de semillas, plantas y productos vegetales importados.
- Análisis de laboratorio de las semillas para detectar infecciones ocultas por patógenos y plagas.
- Desinfección de semillas (tratamiento térmico, desinfección química, tratamiento por radiación).
- Certificación de semillas: confirmación de la conformidad del material de siembra con los requisitos fitosanitarios.
- Aislamiento y destrucción de lotes contaminados de semillas y plantas.
- Monitoreo de la propagación de objetos de cuarentena en el territorio del país.
6.3. Selección para resistencia a enfermedades y plagas
La selección para resistencia a enfermedades y plagas es una de las direcciones prioritarias del mejoramiento de las leguminosas (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008). Las variedades resistentes permiten reducir las pérdidas de cosecha, disminuir el uso de pesticidas, reducir los costos y disminuir el impacto negativo sobre el medio ambiente.
Tipos de resistencia
En la selección para resistencia se distinguen varios tipos de resistencia (Pessarakli, 2020):
- Resistencia vertical (oligogénica, específica de raza): controlada por uno o varios genes principales, proporciona protección completa contra determinadas razas del patógeno, pero es fácilmente superada con la aparición de nuevas razas virulentas. Ejemplos: genes de resistencia a la antracnosis del frijol (Co-1 – Co-10), genes de resistencia a la marchitez por Fusarium del guisante (Fw, Fwf) (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
- Resistencia horizontal (poligénica, inespecífica): controlada por muchos genes de efecto pequeño, proporciona protección parcial contra un amplio círculo de razas del patógeno, es más duradera, pero más difícil de seleccionar. Ejemplos: resistencia a la ascoquitosis del garbanzo, resistencia a las podredumbres radicales del frijol (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
- Resistencia de campo (tolerancia): capacidad de la planta de soportar la infección sin una reducción significativa del rendimiento, aunque el patógeno pueda desarrollarse en los tejidos de la planta (Pessarakli, 2020).
Fuentes de genes de resistencia
Las fuentes de genes de resistencia para la selección de leguminosas son (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008):
- Variedades y líneas cultivadas con resistencia conocida.
- Parientes silvestres (GP1–GP3): como se discutió en el capítulo 5, las especies silvestres de soja, frijol, guisante, garbanzo y alfalfa poseen genes valiosos de resistencia a enfermedades y plagas (Prohens & Nuez, 2008).
- Variedades locales: variedades autóctonas que han conservado la resistencia como resultado de una selección prolongada en condiciones de fondo infeccioso natural.
- Mutantes inducidos: obtenidos mediante mutagénesis química o radiación.
Métodos de selección para resistencia
Los principales métodos de selección para resistencia incluyen (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008):
- Hibridación: cruzamiento de formas parentales resistentes y susceptibles con posterior selección de descendientes resistentes.
- Retrocruzamientos: transferencia de genes de resistencia de formas silvestres o locales a variedades élite mediante cruzamientos repetidos con el progenitor recurrente.
- Piramidación de genes: combinación en un mismo genotipo de varios genes de resistencia a diferentes razas del patógeno para crear resistencia duradera (Pessarakli, 2020).
- Selección asistida por marcadores (MAS): uso de marcadores moleculares ligados a genes de resistencia para acelerar el proceso de selección y aumentar su eficacia (Pessarakli, 2020; Hollingsworth et al., 1999).
- Selección genómica: uso de datos de genoma completo para predecir el valor selectivo de los genotipos (Pessarakli, 2020).
- Transformación genética: transferencia directa de genes de resistencia de especies silvestres u otros organismos a variedades cultivadas (Prohens & Nuez, 2008).
Ejemplos de selección para resistencia
Selección de soja para resistencia al nematodo del quiste de la soja: Los genes de resistencia (rhg1, rhg2, rhg3, rhg4) fueron transferidos de la soja silvestre G. soja y se utilizan para crear variedades resistentes (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
Selección de frijol para resistencia a la antracnosis: Los genes Co-1 – Co-10 fueron identificados en formas silvestres de P. vulgaris y P. coccineus. Se han creado variedades con pirámides de varios genes de resistencia (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
Selección de guisante para resistencia a la marchitez por Fusarium: Los genes Fw (resistencia a la raza 1) y Fwf (resistencia a la raza 5) fueron transferidos de formas silvestres de P. sativum subsp. elatius (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
Selección de garbanzo para resistencia a la ascoquitosis: Los genes de resistencia fueron identificados en C. reticulatum y C. echinospermum. Se han creado variedades resistentes (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008).
6.4. Evaluación de las cualidades forrajeras y alimentarias
La sistemática y la taxonomía desempeñan un papel importante en la evaluación de las cualidades forrajeras y alimentarias de las leguminosas, ya que diferentes especies y variedades difieren sustancialmente en composición química, valor nutritivo y presencia de factores antinutricionales (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Connor et al., 2011).
Evaluación de las cualidades forrajeras
Las leguminosas forrajeras (alfalfa, trébol, esparceta, veza, meliloto, etc.) se evalúan según los siguientes indicadores (Connor et al., 2011):
- Contenido de proteína bruta: indicador más importante del valor nutritivo. En las leguminosas forrajeras constituye el 15–25 % de la materia seca (Connor et al., 2011).
- Digestibilidad de la materia seca: se determina in vitro o in vivo. Un alto contenido de fibra reduce la digestibilidad.
- Contenido de fibra: fibra neutro detergente (NDF) y fibra ácido detergente (ADF): indicadores relacionados con el consumo y la digestibilidad del forraje.
- Contenido de minerales: calcio, fósforo, potasio, magnesio y microelementos.
- Contenido de factores antinutricionales: taninos, alcaloides, saponinas, glucósidos cianogénicos, inhibidores de proteasas (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- Palatabilidad: determinada por las características específicas y el contenido de factores antinutricionales.
Los métodos estándar de evaluación de las cualidades forrajeras incluyen el análisis químico (método de Weende), la digestibilidad in vitro (método de Tilley-Terry) y el análisis NDF/ADF (método de Van Soest) (Connor et al., 2011).
Evaluación de las cualidades alimentarias
Las leguminosas alimentarias (guisante, frijol, soja, garbanzo, lenteja, etc.) se evalúan según los siguientes indicadores (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008):
- Contenido de proteína: 20–50 % según la especie y la variedad.
- Composición de aminoácidos: contenido de aminoácidos esenciales (lisina, metionina, cisteína, triptófano). Las leguminosas suelen ser ricas en lisina, pero limitadas en aminoácidos azufrados (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- Contenido de carbohidratos: almidón, azúcares, fibra.
- Contenido de grasas: especialmente importante para los cultivos oleaginosos (soja, cacahuete).
- Contenido de vitaminas: grupo B, vitamina C, provitamina A.
- Contenido de minerales: hierro, calcio, zinc, fósforo.
- Factores antinutricionales: inhibidores de tripsina y quimotripsina, lectinas (hemaglutininas), saponinas, taninos, ácido fítico, oligosacáridos (rafinosa, estaquiosa) que provocan meteorismo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- Cualidades culinarias: tiempo de cocción, desintegración, sabor, color, textura.
Para evaluar las cualidades alimentarias se utilizan métodos estándar: determinación del contenido de proteína (método de Kjeldahl), análisis de aminoácidos (HPLC), determinación del contenido de grasa (método de Soxhlet), determinación de factores antinutricionales (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
Papel de la sistemática en la evaluación de la calidad
La sistemática ayuda a:
- Predecir la calidad sobre la base de la pertenencia taxonómica: por ejemplo, las especies de la subfamilia Faboideae suelen ser ricas en proteína y tener buena digestibilidad; algunas Caesalpinioideae contienen sustancias tóxicas (LPWG, 2017).
- Elegir los métodos correctos de evaluación en función de la especie: por ejemplo, para evaluar la calidad de la soja se utilizan métodos de determinación del contenido de aceite; para evaluar la calidad de la alfalfa, métodos de determinación de la digestibilidad (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
- Identificar factores antinutricionales: el conocimiento de la taxonomía permite predecir la presencia de determinados compuestos tóxicos (por ejemplo, el favismo en Vicia faba, el latirismo en Lathyrus sativus) (Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
6.5. Leguminosas arvenses y su control
Muchas especies de leguminosas son malas hierbas peligrosas que infestan los cultivos agrícolas, incluidas las propias leguminosas (Pessarakli, 2020; Rubatzky & Yamaguchi, 1997). Las leguminosas arvenses reducen el rendimiento, dificultan la cosecha, empeoran la calidad de la producción y pueden ser tóxicas para los animales y las personas.
Principales leguminosas arvenses
Entre las leguminosas arvenses más распространённые (Pessarakli, 2020; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Cuscuta (Cuscuta spp.): planta parásita sin clorofila que envuelve los tallos de las leguminosas y otros cultivos. Incluida en las listas de cuarentena. Ataca la alfalfa, el trébol, la veza y el guisante.
- Cardo ruso (Acroptilon repens): mala hierba perenne de raíz pivotante que infesta los cultivos de alfalfa y otros cultivos.
- Correhuela (Convolvulus arvensis): mala hierba perenne de raíz pivotante que envuelve los tallos de las leguminosas.
- Ambrosía (Ambrosia artemisiifolia): mala hierba anual cuarentenaria que provoca alergias.
- Meliloto (Melilotus spp.): puede convertirse en mala hierba en los cultivos de otros cultivos, aunque él mismo es un valioso cultivo forrajero.
- Veza arvense (Vicia spp.): algunas especies de veza son malas hierbas en los cultivos de cereales y otros cultivos.
- Altramuz arvense (Lupinus spp.): algunas especies de altramuz son malas hierbas y contienen alcaloides tóxicos para el ganado.
- Mimosa (Mimosa spp.): algunas especies son malas hierbas en los trópicos.
Métodos de control de las leguminosas arvenses
El control de las leguminosas arvenses incluye un complejo de medidas (Pessarakli, 2020; Rubatzky & Yamaguchi, 1997):
- Métodos agrotécnicos: rotación de cultivos, laboreo del suelo, siembra y cosecha oportunas, uso de semillas limpias, siega de las malas hierbas antes de la fructificación.
- Métodos químicos: aplicación de herbicidas selectivos. Para el control de leguminosas arvenses en cultivos de cereales se utilizan herbicidas del grupo 2,4-D, dicamba, metsulfurón-metilo; en cultivos de leguminosas, imazetapir, bentazón, clomazona (Pessarakli, 2020).
- Métodos biológicos: uso de insectos fitófagos, patógenos fúngicos y preparados bacterianos para suprimir las malas hierbas. Por ejemplo, para el control del cardo ruso se utiliza el nematodo del cardo (Subanguina picridis).
- Medidas de cuarentena: prevención de la introducción de malas hierbas cuarentenarias con el material de siembra, control de las semillas importadas.
Particularidades del control de la cuscuta
La cuscuta (Cuscuta spp.) es una de las malas hierbas parásitas cuarentenarias más peligrosas. Las medidas de control incluyen (Pessarakli, 2020):
- Medidas de cuarentena: revisión cuidadosa del material de siembra, destrucción de los lotes contaminados.
- Métodos agrotécnicos: rotación de cultivos excluyendo las plantas hospedadoras, arado profundo, siega de la cuscuta antes de la fructificación.
- Métodos químicos: tratamiento con herbicidas (etiofeno, imazetapir, cloramurón) antes de la emergencia del cultivo.
- Métodos biológicos: uso de patógenos fúngicos (Alternaria spp., Colletotrichum spp.) para suprimir la cuscuta.
7. Conclusión
7.1. Fabaceae: una familia única que combina una enorme diversidad y un papel clave en la agricultura sostenible
A lo largo de siete lecciones hemos examinado una de las familias más sorprendentes y significativas de plantas con flores: Fabaceae, o Leguminosae. Esta familia, que cuenta con alrededor de 770 géneros y más de 19 500 especies, ocupa el tercer lugar entre todas las familias de plantas con flores por número de especies, cediendo solo ante Asteraceae y Orchidaceae (LPWG, 2017; Judd et al., 2018). Las leguminosas están distribuidas cosmopolitamente, desde las tundras árticas hasta los bosques tropicales lluviosos, desde los desiertos hasta los humedales, y están representadas por todas las formas de vida: desde grandes árboles tropicales emergentes hasta anuales herbáceas de las latitudes templadas, desde lianas hasta suculentas (Schrire et al., 2005a, b; LPWG, 2017).
Esta diversidad refleja la amplia plasticidad ecológica de la familia y su capacidad de adaptarse a las más diversas condiciones ambientales. Las leguminosas dominan en los bosques tropicales secos y las sabanas, desempeñan un papel clave en las comunidades mediterráneas, desérticas y templadas, y se elevan hasta altas latitudes y altitudes (LPWG, 2017). Son componentes ecológicos importantísimos de prácticamente todos los ecosistemas terrestres.
La importancia económica de las leguminosas difícilmente puede sobreestimarse. Por su importancia económica, la familia cede solo ante Poaceae (gramíneas) (LPWG, 2017). Las leguminosas proporcionan a la humanidad:
- Proteína alimentaria: los cultivos de leguminosas de grano (guisante, frijol, soja, garbanzo, lenteja, cacahuete) contienen 20–50 % de proteína y son la fuente más importante de proteína vegetal (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008);
- Aceite vegetal: la soja y el cacahuete son los cultivos oleaginosos más importantes del mundo (Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Forraje para animales: la alfalfa, el trébol, la esparceta y la veza son la base de la producción de forrajes de las latitudes templadas (Connor et al., 2011);
- Materias primas para la industria: madera, taninos, gomas, colorantes, medicamentos, aceites esenciales (LPWG, 2017);
- Plantas ornamentales: robinia, glicinia, altramuz, delonix, bauhinia (LPWG, 2017).
Sin embargo, la principal característica única de las leguminosas es su capacidad de fijación simbiótica de nitrógeno, un proceso por el cual el nitrógeno molecular atmosférico se transforma en formas disponibles para las plantas con ayuda de bacterias rizobias que habitan en nódulos en las raíces (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). Esta capacidad convierte a las leguminosas en componentes irremplazables de los agroecosistemas sostenibles, ya que no solo satisfacen sus necesidades de nitrógeno, sino que también enriquecen el suelo con nitrógeno disponible para los cultivos siguientes (Connor et al., 2011; Marschner, 2012).
A escala global, la fijación biológica de nitrógeno aporta alrededor del 60 % de todo el nitrógeno que entra en los ecosistemas terrestres, y la fijación simbiótica por leguminosas constituye alrededor del 50 % de esa cantidad: aproximadamente 40–70 millones de toneladas de nitrógeno al año (Herridge et al., 2008; Marschner, 2012). Para comparar: la producción industrial de fertilizantes nitrogenados aporta alrededor de 100 millones de toneladas de nitrógeno al año (Connor et al., 2011). Así, la fijación simbiótica de nitrógeno por las leguminosas es un recurso renovable de nitrógeno que puede reducir la dependencia de la agricultura de los combustibles fósiles y disminuir el impacto negativo sobre el medio ambiente.
7.2. La comprensión de la filogenia y de las relaciones simbióticas es necesaria para la selección y las agrotecnologías
La sistemática moderna de las leguminosas ha sufrido cambios revolucionarios en las últimas dos décadas. La división tradicional de la familia en tres subfamilias —Faboideae (Papilionoideae), Mimosoideae y Caesalpinioideae— resultó insostenible desde el punto de vista filogenético: los estudios moleculares filogenéticos mostraron unívocamente que las Caesalpinioideae en el sentido tradicional son parafiléticas y que las Mimosoideae están anidadas en ellas (LPWG, 2017; Judd et al., 2018; Doyle et al., 1997; Bruneau et al., 2008).
La nueva clasificación del LPWG (2017), basada en el análisis filogenético más completo, reconoce seis subfamilias monofiléticas:
1. Cercidoideae: 12 géneros, alrededor de 335 especies;
2. Detarioideae: 84 géneros, alrededor de 760 especies;
3. Duparquetioideae: 1 género, 1 especie;
4. Dialioideae: 17 géneros, alrededor de 85 especies;
5. Caesalpinioideae (en el nuevo sentido, incluido el clado de las mimosoideas): 148 géneros, alrededor de 4400 especies;
6. Faboideae (Papilionoideae): 503 géneros, alrededor de 14 000 especies.
Esta clasificación refleja no solo las ideas filogenéticas modernas, sino también las tendencias evolutivas de la familia. Las subfamilias basales (Cercidoideae, Detarioideae, Duparquetioideae, Dialioideae) no forman nódulos radicales y conservan una serie de caracteres plesiomórficos; los clados más jóvenes y ricos en especies —las Caesalpinioideae redefinidas (incluido el clado de las mimosoideas) y las Faboideae— muestran una considerable diversidad morfológica y ecológica e incluyen la mayoría de los géneros de importancia económica (LPWG, 2017; Judd et al., 2018).
La comprensión de la filogenia de las leguminosas tiene una importancia práctica fundamental para la selección y las agrotecnologías:
- Identificación precisa. La comprensión de las relaciones filogenéticas permite identificar con mayor precisión los géneros y especies de leguminosas, lo que es crítico para la cuarentena vegetal, la producción de semillas y la introducción (Pessarakli, 2020; Sharma, 2009).
- Selección y recursos genéticos. El conocimiento de la filogenia ayuda a identificar los parientes silvestres más cercanos de las especies cultivadas, que pueden servir como donantes de genes de resistencia a enfermedades, plagas y estreses abióticos (Prohens & Nuez, 2008; LPWG, 2017).
- Fijación simbiótica de nitrógeno. La comprensión de la evolución de la simbiosis con rizobios permite seleccionar de forma dirigida cepas eficaces de bacterias para la inoculación de semillas y desarrollar estrategias de uso de las leguminosas en las rotaciones (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019).
- Producción de forrajes. La nueva clasificación ayuda a sistematizar las leguminosas forrajeras y evaluar su valor nutritivo y sus propiedades agrotécnicas (Connor et al., 2011).
- Plantas arvenses. Muchas leguminosas son malas hierbas (por ejemplo, algunas especies de Vicia, Lathyrus, Mimosa). La identificación precisa y la comprensión de sus relaciones filogenéticas son necesarias para desarrollar medidas de control eficaces (Pessarakli, 2020; LPWG, 2017).
La simbiosis de las leguminosas con rizobios es una capacidad única que determina su papel en el ciclo del nitrógeno y en la agricultura sostenible. Los rizobios son un grupo polifilético de bacterias fijadoras de nitrógeno que incluye representantes de Alphaproteobacteria (Rhizobium, Bradyrhizobium, Sinorhizobium, Mesorhizobium, etc.) y Betaproteobacteria (Burkholderia, Cupriavidus) (Marschner, 2012; Lambers & Oliveira, 2019). La especificidad de la simbiosis está determinada por un complejo diálogo molecular entre los socios, que incluye el intercambio de flavonoides y factores Nod (Schopfer & Brennicke, 2016; Lambers & Oliveira, 2019).
La evolución de la simbiosis: la predisposición a la formación de nódulos surgió una sola vez dentro de Fabids y tiene un origen común con la simbiosis micorrícica arbuscular (Soltis et al., 1995; Doyle, 2011, 2012). En diferentes linajes de leguminosas se produjeron múltiples pérdidas de la capacidad de simbiosis, especialmente en las subfamilias basales (Doyle, 2011, 2012; LPWG, 2017). La importancia práctica de la fijación simbiótica de nitrógeno es enorme: permite reducir la dependencia de los fertilizantes nitrogenados, enriquecer el suelo con nitrógeno, utilizar las leguminosas como abonos verdes e incluirlas en las rotaciones (Connor et al., 2011; Marschner, 2012).
7.3. Los parientes silvestres: un recurso estratégico para el futuro
Los parientes silvestres de las leguminosas cultivadas representan un recurso estratégico para el futuro de la selección, que garantiza la resistencia y la adaptabilidad de las variedades cultivadas en condiciones de cambio climático y creciente presión de los patógenos (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
El concepto de acervos genéticos (GP1–GP3) permite clasificar los recursos genéticos según el grado de facilidad de su uso en la selección (Harlan & de Wet, 1971; Prohens & Nuez, 2008):
- GP1: variedades cultivadas y formas silvestres de la misma especie, que se cruzan fácilmente con las plantas cultivadas;
- GP2: especies cercanamente emparentadas, cuyo cruzamiento es posible pero conlleva dificultades;
- GP3: especies distantas, cuyo cruzamiento requiere métodos especiales.
Hemos examinado los ejemplos más importantes de uso de parientes silvestres en la selección de leguminosas:
- Soja: Glycine soja, antepasado silvestre que posee resistencia a nematodos, enfermedades y estreses abióticos (Prohens & Nuez, 2008; Rubatzky & Yamaguchi, 1997);
- Frijol: especies silvestres de Phaseolus (P. vulgaris var. aborigineus, P. acutifolius, P. coccineus, P. lunatus): fuentes de genes de resistencia a la antracnosis, enfermedades bacterianas y sequía (Prohens & Nuez, 2008; Singh, 2001);
- Guisante: Pisum sativum subsp. elatius: fuente de genes de resistencia a Fusarium, mildiu velloso y ascoquitosis (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020);
- Garbanzo: Cicer reticulatum: fuente de genes de resistencia a la ascoquitosis, Fusarium y sequía (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020);
- Alfalfa: especies silvestres de Medicago: fuentes de genes de resistencia a Fusarium, Verticillium, nematodos y sequía (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
Las estrategias de uso de parientes silvestres incluyen la introgresión de genes de resistencia, la piramidación de genes, la selección asistida por marcadores (MAS), la selección genómica y la transformación genética (Pessarakli, 2020; Prohens & Nuez, 2008; Hollingsworth et al., 1999). Sin embargo, el uso de parientes silvestres conlleva una serie de problemas: barreras de cruzamiento, ligamiento de caracteres indeseables, variabilidad de los patógenos y limitación de los recursos genéticos (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
La conservación de los recursos genéticos de las leguminosas es una de las tareas clave de la agronomía y la genética vegetal modernas. Los Bancos de genes, como CIAT (Centro Internacional de Agricultura Tropical), ICARDA (International Center for Agricultural Research in the Dry Areas), ICRISAT (International Crops Research Institute for the Semi-Arid Tropics) y otros, conservan decenas de miles de muestras de leguminosas cultivadas y silvestres (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008). Estas colecciones sirven de base para la selección de nuevas variedades resistentes y productivas.
7.4. Perspectivas de estudio y uso ulterior de las leguminosas
Las leguminosas siguen siendo uno de los grupos de plantas más activamente estudiados. Las investigaciones modernas se desarrollan en varias direcciones clave:
1. Filogenia y sistemática. Continúa el refinamiento de las relaciones filogenéticas dentro de la familia con el uso de datos de genoma completo (filogenómica), lo que permitirá crear una clasificación más detallada y estable (LPWG, 2017; Judd et al., 2018).
2. Genómica y biología molecular. La secuenciación de los genomas de los cultivos de leguminosas más importantes (soja, frijol, guisante, garbanzo, alfalfa) abre nuevas posibilidades para la identificación de genes de caracteres de valor económico y la selección asistida por marcadores (Pessarakli, 2020; Hollingsworth et al., 1999).
3. Fijación simbiótica de nitrógeno. El estudio de los mecanismos moleculares de la simbiosis, la especificidad y la evolución de los nódulos permite desarrollar estrategias para aumentar la eficacia de la fijación de nitrógeno y ampliar el círculo de plantas capaces de simbiosis (Doyle, 2011, 2012; Lambers & Oliveira, 2019; Van Velzen et al., 2019).
4. Selección para resistencia. El desarrollo de nuevos métodos de selección (selección genómica, edición del genoma con CRISPR/Cas9) permite acelerar la creación de variedades resistentes a enfermedades, plagas y estreses abióticos (Pessarakli, 2020).
5. Agricultura sostenible. La integración de las leguminosas en las rotaciones, el uso de abonos verdes, la enmienda verde y la fijación biológica de nitrógeno son elementos clave de la agricultura sostenible, que reduce la dependencia de los fertilizantes minerales y los pesticidas (Connor et al., 2011).
6. Cambio climático. Las leguminosas, gracias a su capacidad de fijar nitrógeno y a su amplia plasticidad ecológica, pueden desempeñar un papel importante en la adaptación de la agricultura al cambio climático (Pessarakli, 2020; Connor et al., 2011).
7. Seguridad alimentaria. Las leguminosas son la fuente más importante de proteína vegetal para la población de los países en desarrollo. El aumento del rendimiento y la resistencia de los cultivos de leguminosas es una tarea clave para garantizar la seguridad alimentaria (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Prohens & Nuez, 2008).
7.5. Disposiciones finales del curso
Resumiendo todo el curso de lecciones sobre la sistemática de las leguminosas, pueden formularse las siguientes disposiciones clave:
1. Fabaceae es la tercera familia de plantas con flores por tamaño, con alrededor de 770 géneros y más de 19 500 especies, de distribución cosmopolita y representada por todas las formas de vida (LPWG, 2017; Judd et al., 2018).
2. La monofilia de la familia está confirmada de forma fiable por datos moleculares y morfológicos; sus parientes más cercanos son las familias Polygalaceae, Surianaceae y Quillajaceae dentro del orden Fabales (Judd et al., 2018; LPWG, 2017).
3. La nueva clasificación del LPWG (2017) reconoce seis subfamilias monofiléticas: Cercidoideae, Detarioideae, Duparquetioideae, Dialioideae, Caesalpinioideae (incluido el clado de las mimosoideas) y Faboideae. La división tradicional en tres subfamilias no refleja la filogenia real (LPWG, 2017).
4. Las leguminosas desempeñan un papel clave en la alimentación humana, la alimentación animal y la agricultura sostenible gracias a su alto contenido de proteína, aceite y su capacidad de fijación simbiótica de nitrógeno (Rubatzky & Yamaguchi, 1997; Connor et al., 2011; Marschner, 2012).
5. La simbiosis con rizobios es una capacidad única de las leguminosas que les permite fijar nitrógeno atmosférico y enriquecer el suelo. La especificidad de la simbiosis está determinada por el diálogo molecular entre los socios; la evolución de la simbiosis tiene un origen único dentro de Fabids con múltiples pérdidas (Doyle, 2011, 2012; Lambers & Oliveira, 2019).
6. Los parientes silvestres de las leguminosas cultivadas son un recurso estratégico para la selección para resistencia a enfermedades, plagas y estreses abióticos; su conservación y uso racional es una tarea clave de la agronomía moderna (Prohens & Nuez, 2008; Pessarakli, 2020).
7. Uso práctico de la sistemática de las leguminosas incluye la identificación de especies y variedades, el control cuarentenario, la selección para resistencia, la evaluación de las cualidades forrajeras y alimentarias y el control de las leguminosas arvenses (Pessarakli, 2020; Sharma, 2009; Rubatzky & Yamaguchi, 1997).
8. Las investigaciones modernas sobre las leguminosas se realizan con el uso de la filogenómica, la genómica, la biología molecular y los métodos de edición del genoma, lo que abre nuevas perspectivas para la selección y la agricultura sostenible (Pessarakli, 2020; Hollingsworth et al., 1999).
7.6. Observaciones finales
Las leguminosas son una familia sorprendente que combina una enorme diversidad, características biológicas únicas y un papel clave en la agricultura sostenible. Desde los árboles tropicales emergentes hasta las anuales herbáceas de las latitudes templadas, desde los cultivos alimentarios hasta las gramíneas forrajeras, desde los fijadores simbióticos de nitrógeno hasta las plantas ornamentales, las leguminosas acompañan a la humanidad a lo largo de toda su historia y desempeñarán un papel importantísimo en el futuro.
La comprensión de la filogenia, la sistemática y las relaciones simbióticas de las leguminosas es necesaria para:
- La selección de nuevas variedades resistentes y productivas;
- Las agrotecnologías basadas en la fijación biológica de nitrógeno y la agricultura sostenible;
- La conservación de la biodiversidad y de los recursos genéticos;
- Garantizar la seguridad alimentaria y el desarrollo sostenible.
Los parientes silvestres de las leguminosas cultivadas son un recurso estratégico para el futuro, y su conservación es una de las tareas clave de la ciencia y la práctica modernas. Como escribió E.J.H. Corner (1976): «Esperamos el tratado que revivirá el herbario en un árbol vivo de filogenia». La sistemática moderna de las leguminosas, armada con métodos moleculares y un enfoque filogenético, hace realidad ese tratado.
Las leguminosas no son simplemente una familia de plantas. Son la base de la agricultura sostenible, una fuente de alimentación para miles de millones de personas, un elemento clave del ciclo del nitrógeno y un recurso estratégico para el futuro de la humanidad. Su estudio y uso racional es una tarea digna de la atención de toda la comunidad científica.
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