Грибы

Обновлено: 22 сентября 2026

1. Грибы — отдельное царство живой природы

Грибы — одна из самых удивительных и разнообразных групп живых организмов, с которой каждому агроному придётся сталкиваться ежедневно: будь то борьба с фитопатогенами, использование микоризных препаратов или переработка растительных остатков.

Прежде чем перейти к систематике и классификации, нам необходимо чётко определить, что же такое грибы, чем они принципиально отличаются от растений и животных, и какое место занимают в биосфере и агросфере. Это фундамент, без которого невозможно осмысленное изучение отдельных групп.

1.1. Грибы — не растения и не животные

Долгое время в истории биологии грибы рассматривались как часть растительного царства. Основания для этого были: они неподвижны, имеют клеточную стенку, растут верхушечно и размножаются спорами. Однако уже во второй половине XX века, с развитием электронной микроскопии, биохимии и молекулярной биологии, стало очевидно, что это сходство — поверхностное, а по целому ряду ключевых признаков грибы принципиально отличаются от растений (Alexopoulos et al., 1996).

Согласно современным представлениям, грибы — это гетеротрофные эукариотические организмы, которые питаются путём всасывания (осмотрофии), имеют хитиновые клеточные стенки (у большинства групп), запасают гликоген (а не крахмал, как растения) и не содержат хлорофилла (Alexopoulos et al., 1996; Webster & Weber, 2007).

Давайте разберём эти признаки последовательно.

Гетеротрофность. Грибы не способны к фотосинтезу. Они получают углерод и энергию, разлагая готовые органические вещества. Именно поэтому грибы так важны как редуценты и так опасны как патогены. В отличие от животных, которые заглатывают пищу (ингeстия), грибы выделяют наружу гидролитические ферменты, расщепляющие сложные полимеры (целлюлозу, лигнин, белки, хитин) до растворимых мономеров, которые затем всасываются всей поверхностью мицелия (Webster & Weber, 2007). Этот способ питания называется осмотрофным (от греч. osmos — толчок, давление, и trophe — питание). Осмотрофия определяет всё: и нитевидную форму тела (огромное соотношение поверхности к объёму), и мощные ферментативные системы, и необходимость тесного контакта с субстратом.

Клеточная стенка. У настоящих грибов (Eumycota) клеточная стенка построена на основе хитина — полимера N-ацетилглюкозамина (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013). Хитин — азотсодержащий полисахарид, который не встречается у растений (у них целлюлоза) и лишь изредка — у животных (в экзоскелете членистоногих). Это биохимический маркер, чётко отграничивающий грибы от растений. Важное исключение — оомицеты (Oomycota), у которых клеточная стенка содержит целлюлозу и глюканы, но не хитин. Именно поэтому оомицеты, включая возбудителя фитофтороза Phytophthora infestans, сегодня рассматриваются не как грибы, а как отдельная группа в составе царства Chromista (Stramenopila) (Agrios, 2005; Сокирко, 2019).

Запасные вещества. Грибы запасают гликоген, как животные, а не крахмал, как растения. Это ещё один признак, сближающий их с животными на биохимическом уровне (Alexopoulos et al., 1996).

Отсутствие хлорофилла и пластид. У грибов нет хлоропластов и фотосинтетических пигментов. Даже если некоторые грибы имеют окраску (оранжевые, красные, пурпурные), она обусловлена не хлорофиллом, а каротиноидами, меланинами или другими вторичными метаболитами.

1.2. Молекулярные данные и родственные связи

Молекулярно-филогенетические исследования, основанные на сравнении последовательностей генов 18S и 28S рРНК, а также других консервативных генов, показали, что грибы ближе к животным, чем к растениям (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007). Грибы и животные вместе образуют супергруппу Opisthokonta (заднежгутиковые), для которой характерен один задний жгутик у подвижных клеток (у грибов он сохранился только у хитридиомицетов). Растения же относятся к другой супергруппе — Archaeplastida.

Считается, что грибы отделились от общего с животными предка примерно 900–1500 млн лет назад (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013). Древнейшие ископаемые остатки, похожие на грибы, датируются нижним кембрием (около 544 млн лет назад), а хорошо сохранившиеся грибы, близкие к современным хитридиомицетам и гломеромицетам, найдены в отложениях девонского периода (около 400 млн лет назад) (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Таким образом, грибы — это самостоятельное царство (Fungi, или Mycota), равнозначное по рангу царствам Plantae (растения), Animalia (животные), Chromista (хромисты, включая оомицеты) и Protozoa (простейшие, включая слизевиков) (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

Следует подчеркнуть, что в широком смысле под «грибами» часто понимают все гетеротрофные осмотрофные организмы с мицелиальным строением, включая оомицетов. Однако с точки зрения современной систематики это сборная экологическая группа, а не естественный таксон. В нашем курсе мы будем придерживаться строгого филогенетического подхода: оомицеты рассматриваются отдельно, в царстве Chromista, хотя и изучаются в одном модуле с грибами в силу их огромного значения для агросферы (Сокирко, 2019).

1.3. Разнообразие и экологическая роль грибов

Грибы — одна из самых многочисленных групп живых организмов. По оценкам, на Земле существует от 1,5 до 5 миллионов видов грибов, из которых описано лишь около 100–120 тысяч (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996). Это означает, что мы знаем лишь малую часть грибного разнообразия. Ежегодно описывается около 1200 новых видов (Raven et al., 2013).

Экологическое значение грибов огромно. Вместе с гетеротрофными бактериями они являются главными редуцентами биосферы. Они разлагают органические остатки — опавшую листву, древесину, трупы животных — и возвращают углерод, азот, фосфор и другие элементы в почву, делая их доступными для растений. Без грибов круговорот веществ в природе был бы невозможен (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Особенно важна роль грибов в разложении древесины. Ни животные, ни большинство бактерий не способны эффективно разрушать лигнин и целлюлозу. Грибы — единственные организмы, которые в значительной степени осуществляют этот процесс, выделяя мощные окислительные ферменты (лакказы, пероксидазы). Именно поэтому грибы определяют скорость разложения лесной подстилки и высвобождения углерода в лесных экосистемах (Raven et al., 2013; Lambers & Oliveira, 2019).

Грибы также образуют симбиотические associations с растениями — микоризу (от греч. mykes — гриб и rhiza — корень). Около 85–90% всех сосудистых растений образуют микоризу с грибами (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013). Микоризные грибы увеличивают поглощающую поверхность корней, снабжают растения фосфором, азотом и другими малодоступными элементами, а также защищают от патогенов. Взамен они получают от растения углеводы. Об этом подробно мы поговорим в отдельной лекции.

Наконец, грибы могут быть паразитами растений, животных и человека. Более 10 000 видов грибов вызывают болезни растений (Agrios, 2005). Среди них — возбудители ржавчины, головни, парши, фузариозов, фитофтороза (последний — оомицет), мучнистой росы и многих других болезней. Патогенные грибы ежегодно уничтожают значительную часть мирового урожая сельскохозяйственных культур, а некоторые из них (например, спорынья) могут быть опасны и для человека из-за микотоксинов.

1.4. Значение грибов для агросферы

Для агронома значение грибов многогранно. Можно выделить пять основных аспектов.

1. Фитопатогены. Грибы и грибоподобные организмы (оомицеты) — главные возбудители болезней сельскохозяйственных культур. По оценкам, потери урожая от грибных болезней достигают 10–20% мирового производства продовольствия, а в отдельные годы и регионах — значительно больше (Agrios, 2005). Примерами могут служить фитофтороз картофеля (Phytophthora infestans — оомицет), вызывавший ирландский голод 1840-х годов; пирикуляриоз риса (Magnaporthe oryzae); фузариозное увядание (Fusarium oxysporum); серая гниль (Botrytis cinerea); парша яблони (Venturia inaequalis); спорынья злаков (Claviceps purpurea) (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020). Помимо прямых потерь урожая, фитопатогенные грибы продуцируют микотоксины — ядовитые вторичные метаболиты, опасные для человека и животных. Афлатоксины (Aspergillus flavus), фумонизины (Fusarium moniliforme), дезоксиниваленол (Fusarium graminearum) — лишь некоторые из них (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

2. Микоризные симбионты. Как уже упоминалось, микориза играет ключевую роль в питании растений. Для агронома это означает, что микоризные грибы могут повышать продуктивность культур, улучшать усвоение фосфора и других элементов, повышать устойчивость к засухе и патогенам. Инокуляция микоризными препаратами (например, на основе Glomus intraradices) всё шире применяется в органическом земледелии и питомниководстве (Lambers & Oliveira, 2019). Мы вернёмся к этому в лекции о Glomeromycota.

3. Редуценты и биодеградация. Грибы разлагают растительные остатки, солому, навоз, способствуя образованию гумуса и повышению плодородия почвы. Некоторые грибы (например, Trichoderma) используются для биоремедиации загрязнённых почв, разложения ксенобиотиков и пестицидов (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

4. Биоконтроль. Многие грибы являются антагонистами фитопатогенов или энтомопатогенами. Trichoderma harzianum подавляет рост возбудителей корневых гнилей; Beauveria bassiana и Metarhizium anisopliae заражают насекомых-вредителей и используются как биологические инсектициды; Entomophthora muscae уничтожает мух (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013). Биоконтроль на основе грибов — быстро развивающееся направление защиты растений.

5. Пищевые и лекарственные виды. Грибы издавна используются человеком. Дрожжи Saccharomyces cerevisiae — основа хлебопечения, виноделия и пивоварения. Penicillium roqueforti и P. camemberti придают сырам характерный вкус и аромат. Aspergillus oryzae используется для ферментации сои (соевый соус, мисо). Многие шляпочные грибы (шампиньон, вешенка, шиитаке) культивируются в промышленных масштабах. Из грибов получают антибиотики (пенициллин из Penicillium chrysogenum), иммуносупрессанты (циклоспорин из Tolypocladium inflatum), статины и другие лекарственные препараты (Raven et al., 2013; Alexopoulos et al., 1996).

1.5. Ключевые понятия и термины

Прежде чем перейти к систематике, зафиксируем основные термины, которые будут использоваться на протяжении всего курса.

Мицелий — совокупность гиф (нитей) гриба. Гифа — отдельная нить. Гифы могут быть септированными (с поперечными перегородками) или асептированными (без перегородок, ценоцитными). У большинства настоящих грибов (Ascomycota, Basidiomycota) гифы септированы, но септы имеют центральную пору, через которую могут проходить органеллы и даже ядра (Webster & Weber, 2007).

Плазмодий — многоядерная масса протоплазмы без клеточных стенок, характерная для слизевиков и некоторых хитридиомицетов (Raven et al., 2013).

Спора — специализированная клетка для размножения и распространения. Споры могут быть бесполыми (митотическими) и половыми (образующимися в результате мейоза). У грибов выделяют зооспоры (подвижные, с жгутиками), спорангиоспоры (в спорангиях), конидии (экзогенные, на конидиеносцах), аскоспоры (в асках), базидиоспоры (на базидиях), зигоспоры и ооспоры (покоящиеся половые споры) (Alexopoulos et al., 1996; Webster & Weber, 2007).

Телеоморфа — половая стадия (совокупность признаков полового размножения). Анаморфа — бесполая стадия. Голоморфа — совокупность всех стадий жизненного цикла (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019). В старой литературе телеоморфу называли «совершенной» стадией, анаморфу — «несовершенной». Отсюда историческое название Deuteromycota (Fungi Imperfecti) — грибы, у которых не известна половая стадия. Сегодня доказано, что большинство дейтеромицетов — это анаморфы аскомицетов или базидиомицетов (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Септа — поперечная перегородка в гифе. У аскомицетов септа простая, с центральной порой; у базидиомицетов — долипоровая (с бочонковидным расширением и парентесомами) (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Гаустория — специализированная гифа паразитического гриба, проникающая в клетку хозяина для поглощения питательных веществ (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

Аппрессорий — уплощённое расширение гифы, служащее для прикрепления к поверхности хозяина и проникновения внутрь (Agrios, 2005).

Склероций — твёрдая покоящаяся структура, состоящая из сплетения гиф, служащая для переживания неблагоприятных условий (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

1.6. Современная филогения грибов: общий обзор

В следующей лекции мы подробно разберём современную систему грибов, но уже сейчас обозначим её контуры. До 1990-х годов грибы делили на четыре основных класса: Chytridiomycetes, Zygomycetes, Ascomycetes, Basidiomycetes, а также искусственную группу Deuteromycetes (несовершенные грибы). Эта классификация была основана преимущественно на морфологии половых структур (Alexopoulos et al., 1996).

Молекулярные данные конца XX — начала XXI века радикально изменили наши представления. Оказалось, что:

— Zygomycota — сборная группа, включающая несколько независимых эволюционных линий, которые сейчас выделяют в отдельные филы: Mucoromycota, Glomeromycota, Entomophthoromycota и др. (Webster & Weber, 2007; Spatafora et al., 2016).

— Chytridiomycota — базальная группа грибов, сохранившая жгутиковые стадии. Вместе с Blastocladiomycota и Neocallimastigomycota они образуют ранние ветви грибного дерева (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

— Microsporidia — внутриклеточные паразиты животных, ранее считавшиеся простейшими, теперь рассматриваются как крайне редуцированные грибы, близкие к хитридиомицетам или зигомицетам (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

— Glomeromycota — отдельная фила, включающая всех арбускулярных микоризных грибов (Lambers & Oliveira, 2019; Webster & Weber, 2007).

— Ascomycota и Basidiomycota — крупнейшие филы, объединяемые в подцарство Dikarya (двуядерные грибы), для которых характерен длительный дикариотический этап в жизненном цикле (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Таким образом, современная филогения грибов выглядит примерно так (упрощённо):

Fungi (Mycota)

  • Chytridiomycota
  • Blastocladiomycota
  • Neocallimastigomycota
  • Microsporidia
  • Glomeromycota
  • Mucoromycota (включая Mucorales, Umbelopsidales, Mortierellales)
  • Ascomycota
  • Basidiomycota

Эту схему мы будем придерживаться в нашем курсе, с необходимыми оговорками и упрощениями для аграрных специальностей (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

2. Современная классификация грибов

Введение

В прошлой главе мы установили, что грибы — это самостоятельное царство живой природы, принципиально отличающееся от растений и животных по типу питания, составу клеточной стенки и молекулярно-генетическим характеристикам. Теперь перед нами стоит задача разобраться, как это огромное разнообразие organised в систему. Какие группы грибов существуют, как они связаны друг с другом и какое место занимают в современной филогенетической классификации?

Без понимания современной системы грибов невозможно осмысленно говорить ни о диагностике болезней, ни о биоконтроле, ни о микоризе. Мы должны чётко усвоить: традиционная классификация грибов, основанная только на морфологии, ушла в прошлое. На смену ей пришла геносистематика (молекулярная систематика), которая радикально перестроила наши представления о родственных связях грибов (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

2.1. Традиционная классификация и её ограничения

До конца XX века грибы классифицировали преимущественно на основе морфологических признаков: строения мицелия (септированный или асептированный), типа половых спор (зигоспоры, аскоспоры, базидиоспоры) и особенностей бесполого размножения (Сокирко, 2019; Alexopoulos et al., 1996).

В классической системе, восходящей к работам конца XIX — начала XX века, царство Fungi делили на несколько крупных групп:

  • Chytridiomycetes — грибы с жгутиковыми зооспорами;
  • Zygomycetes — грибы с зигоспорами (мукоровые);
  • Ascomycetes — сумчатые грибы с аскоспорами;
  • Basidiomycetes — базидиальные грибы с базидиоспорами;
  • Deuteromycetes (Fungi Imperfecti) — «несовершенные» грибы, у которых не известна половая стадия (Alexopoulos et al., 1996).

Эта система была удобна для идентификации, но не отражала эволюционных связей. Молекулярные исследования показали, что многие традиционные группы являются полифилетическими — то есть объединяют организмы, произошедшие от разных предков, но внешне похожие в результате конвергентной эволюции (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Наиболее яркий пример — Zygomycota. Традиционно в эту группу включали все грибы с асептированным мицелием и зигоспорами: мукоровые, энтомофторовые, гломусовые (арбускулярные микоризные грибы), эндогоновые и другие. Однако молекулярно-филогенетические данные показали, что это сборная группа, состоящая из нескольких независимых эволюционных линий, которые разошлись очень давно и не являются близкими родственниками (Webster & Weber, 2007; Spatafora et al., 2016; Сокирко, 2019).

Именно поэтому в современной систематике отказались от Zygomycota как единого таксона и разделили её на несколько самостоятельных фил: Mucoromycota, Glomeromycota, Entomophthoromycota и другие (Webster & Weber, 2007; Spatafora et al., 2016).

2.2. Молекулярная революция в систематике грибов

С 1990-х годов в микологии начали активно применяться молекулярные методы, основанные на анализе последовательностей ДНК, РНК и белков. Этот подход получил название геносистематики или молекулярной систематики (Сокирко, 2019).

Основные молекулярные маркеры, используемые для филогенетического анализа грибов:

  • 18S рРНК (малая субъединица рибосомальной РНК) — используется для сравнения дальнородственных групп, на уровне царств и фил;
  • 28S рРНК (большая субъединица) — для сравнения групп на уровне фил, классов и порядков;
  • ITS-регионы (internal transcribed spacers) — для различения близких видов и штаммов;
  • Гены β-тубулина, актина, фактора элонгации 1α (TEF1), РНК-полимеразы II (RPB2) — дополнительные маркеры для уточнения филогении (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Эти методы позволяют:

1. Определять нуклеотидные последовательности отдельных генов или участков ДНК;

2. Оценивать филогенетические связи таксонов любого уровня;

3. Проверять монофилию (происхождение от одного предка) или полифилию (происхождение от нескольких предков) групп;

4. Оценивать возраст таксонов с помощью принципа «молекулярных часов» (Сокирко, 2019).

Согласно современным данным, древнейшей группой грибов являются хитридиомицеты. Примерно через 100 млн лет после их появления возникли зигомицеты. Сумчатые и базидиальные грибы появились позже — в девонский период, около 400 млн лет назад (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

Важно понимать, что молекулярные методы имеют и ограничения. Последовательности генов могут эволюционировать с разной скоростью, а филогенетические деревья, построенные по разным генам, могут не совпадать. Поэтому современная систематика стремится интегрировать молекулярные, морфологические, ультраструктурные и биохимические данные (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

2.3. Современная система царства Fungi

Согласно современным представлениям, основанным на молекулярно-филогенетических данных, царство Fungi (Mycota) включает следующие основные филы (отделы):

1. Chytridiomycota — хитридиомицеты;

2. Blastocladiomycota — бластокладиевые;

3. Neocallimastigomycota — неокаллимастиговые;

4. Microsporidia — микроспоридии;

5. Glomeromycota — гломеромицеты;

6. Mucoromycota — мукоромицеты;

7. Ascomycota — аскомицеты (сумчатые);

8. Basidiomycota — базидиомицеты.

При этом Ascomycota и Basidiomycota объединяются в подцарство Dikarya (двуядерные грибы), для которого характерен длительный дикариотический этап в жизненном цикле (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Рассмотрим каждую из этих групп кратко, чтобы получить общее представление. Более подробно мы разберём их в последующих лекциях.

Chytridiomycota — хитридиомицеты

Chytridiomycota — это базальная группа грибов, которая сохранила жгутиковые стадии в жизненном цикле. Это единственная группа в царстве Fungi, у которой есть зооспоры и плазмогаметы с одним гладким задним жгутиком (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

Вегетативное тело хитридиомицетов чаще всего представлено одиночной клеткой или ризомицелием (зачаточным мицелием без перегородок). У некоторых представителей (порядок Blastocladiales) образуется несептированный мицелий (Сокирко, 2019).

Клеточная стенка содержит хитин. Бесполое размножение осуществляется зооспорами, которые образуются в зооспорангиях. Половой процесс разнообразен: изогамия, гетерогамия, оогамия, соматогамия. В результате полового процесса образуются покоящиеся споры (цисты), покрытые толстой оболочкой, которые могут сохраняться в почве до 10 лет и более (Сокирко, 2019).

Хитридиомицеты — преимущественно водные организмы, но встречаются и в почве. Среди них есть сапротрофы, разрушающие целлюлозу и хитин, и паразиты водорослей, растений и грибов (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Значение для агросферы: Наиболее важный представитель — Synchytrium endobioticum, возбудитель рака картофеля (Сокирко, 2019; Campos & Ortiz, 2020). Это облигатный внутриклеточный паразит, вызывающий образование характерных бугристых наростов на клубнях картофеля. Заболевание распространено в большинстве стран Европы, Азии, Северной и Южной Америки, Океании. Покоящиеся споры сохраняются в почве более 40 лет, что делает борьбу с ним чрезвычайно сложной (Campos & Ortiz, 2020). Мы подробно разберём рак картофеля в лекции, посвящённой хитридиомицетам.

Другой важный представитель — Olpidium brassicae, паразит корней капусты, который также является вектором вирусов (например, вируса некроза табака) (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

Blastocladiomycota — бластокладиевые

Blastocladiomycota — небольшая группа грибов, ранее включавшаяся в состав Chytridiomycota. Молекулярные данные показали, что это самостоятельная фила, которая, однако, также сохраняет жгутиковые зооспоры (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Бластокладиевые имеют несептированный мицелий с псевдосептами (неполными перегородками). Характерная особенность — наличие ядерной крышки (nuclear cap) в зооспорах и гамма-частиц — органелл, связанных с запасением белка (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Среди бластокладиевых есть сапротрофы (Allomyces, Blastocladiella) и паразиты (Coelomomyces — паразит личинок комаров, Physoderma — паразит растений) (Webster & Weber, 2007).

Значение для агросферы: Physoderma maydis вызывает бурую пятнистость кукурузы, а P. alfalfae — корончатый рак люцерны (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007). Эти заболевания имеют локальное значение, но могут наносить ущерб в отдельных регионах.

Neocallimastigomycota — неокаллимастиговые

Neocallimastigomycota — уникальная группа анаэробных грибов, обитающих в рубце (преджелудке) жвачных животных и слепой кишке лошадей и других травоядных (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Эти грибы облигатно анаэробны, не имеют митохондрий (их функцию выполняют гидрогеносомы), а их зооспоры могут нести от 1 до 16 жгутиков (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019). Они играют ключевую роль в разложении растительных волокон в пищеварительном тракте травоядных, значительно повышая эффективность переваривания корма.

Значение для агросферы: Хотя неокаллимастиговые не являются патогенами, их роль в питании сельскохозяйственных животных огромна. Они способствуют более полному разложению клетчатки, что улучшает усвоение корма и снижает затраты на кормление (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Microsporidia — микроспоридии

Microsporidia — это внутриклеточные паразиты животных, которые долгое время считались простейшими, но молекулярные данные показали, что это крайне редуцированные грибы, близкие к хитридиомицетам или зигомицетам (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Микроспоридии имеют одноклеточное строение, лишены митохондрий (сохранились лишь их рудименты), а их полярная трубка служит для инъекции содержимого споры в клетку хозяина. Они паразитируют в насекомых, рыбах, ракообразных и других животных, включая человека (Raven et al., 2013).

Значение для агросферы: Наибольшее значение имеет Nosema apis и Nosema ceranae — паразиты медоносных пчёл, вызывающие нозематоз. Это заболевание ослабляет пчелиные семьи, снижает медопродуктивность и может приводить к гибели колоний (Raven et al., 2013). Учитывая роль пчёл как опылителей сельскохозяйственных культур, нозематоз представляет серьёзную угрозу для растениеводства.

Glomeromycota — гломеромицеты

Glomeromycota — это отдельная фила грибов, все представители которой образуют арбускулярную микоризу (AM) с корнями растений (Lambers & Oliveira, 2019; Webster & Weber, 2007).

Гломеромицеты не способны расти без растения-хозяина — они являются облигатными биотрофами. Их мицелий асептированный, а размножение происходит бесполым путём — крупными многоядерными спорами (гломероспорами), которые образуются в почве (Raven et al., 2013; Lambers & Oliveira, 2019).

Арбускулярная микориза встречается у 80% всех сосудистых растений, включая большинство сельскохозяйственных культур (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013). Гриб проникает в клетки коры корня, образуя арбускулы — древовидные ветвления, через которые происходит обмен питательными веществами между растением и грибом (Lambers & Oliveira, 2019).

Значение для агросферы: Гломеромицеты улучшают фосфорное питание растений, повышают устойчивость к засухе, патогенам и засолению. Инокуляция микоризными препаратами на основе Glomus intraradices (син. Rhizophagus irregularis) широко применяется в органическом земледелии и питомниководстве (Lambers & Oliveira, 2019). Мы подробно разберём эту группу в отдельной лекции.

Mucoromycota — мукоромицеты

Mucoromycota — это фила, которая объединяет бывшие «зигомицеты» в новом, монофилетическом понимании. В её состав входят порядки Mucorales, Umbelopsidales и Mortierellales (Webster & Weber, 2007; Spatafora et al., 2016).

Мукоромицеты имеют асептированный (ценоцитный) мицелий, размножаются спорангиоспорами (бесполое размножение) и зигоспорами (половое размножение). Они широко распространены в почве, на растительных остатках, пищевых продуктах (Webster & Weber, 2007).

Значение для агросферы: Среди мукоромицетов есть сапротрофы (Rhizopus, Mucor), вызывающие мягкие гнили фруктов, овощей, корнеплодов при хранении и транспортировке (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007). Некоторые виды (Choanephora cucurbitarum) являются паразитами растений, вызывая гнили цветков и плодов тыквенных (Agrios, 2005). Отдельные представители (Rhizopus stolonifer) могут быть патогенами человека (мукормикоз) у иммунокомпрометированных лиц (Webster & Weber, 2007).

Важно отметить, что Glomeromycota ранее включалась в Zygomycota, но теперь выделена в отдельную филу, так как молекулярные данные показали её глубокую обособленность (Webster & Weber, 2007; Lambers & Oliveira, 2019).

Ascomycota — аскомицеты (сумчатые грибы)

Ascomycota — крупнейшая фила грибов, включающая более 32 000 описанных видов (по некоторым оценкам — до 64 000) (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013). Это более половины всех известных грибов.

Ключевой признак аскомицетов — аск (сумка) — клетка, в которой образуются аскоспоры (обычно 8) в результате мейоза. Аски могут быть голыми (у дрожжей) или заключёнными в аскокарпы (плодовые тела): клейстотеции (закрытые), перитеции (с отверстием), апотеции (открытые чашевидные) (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Мицелий аскомицетов септированный, с простыми порами. Бесполое размножение осуществляется конидиями, которые образуются на конидиеносцах (Webster & Weber, 2007).

Значение для агросферы: Аскомицеты — важнейшая группа фитопатогенов. Среди них:

  • Fusarium — фузариозные увядания, корневые гнили, фузариоз колоса;
  • Venturia inaequalis — парша яблони;
  • Claviceps purpurea — спорынья злаков;
  • Sclerotinia sclerotiorum — склеротиниоз (белая гниль);
  • Botrytis cinerea — серая гниль;
  • Alternaria — альтернариозы;
  • Colletotrichum — антракнозы;
  • Magnaporthe oryzae — пирикуляриоз риса (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Полезные аскомицеты:

  • Saccharomyces cerevisiae — дрожжи (хлебопечение, виноделие, пивоварение);
  • Penicillium — продуцент пенициллина, сыры (Roquefort, Camembert);
  • Aspergillus — ферменты, лимонная кислота, но также афлатоксины;
  • Trichoderma — биоконтроль фитопатогенов;
  • Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae — энтомопатогены (биоинсектициды);
  • Morchella (сморчки), Tuber (трюфели) — съедобные грибы (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Basidiomycota — базидиомицеты

Basidiomycota — вторая по величине фила грибов, включающая около 22 300–30 000 видов (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Ключевой признак — базидия — клетка, на которой экзогенно образуются базидиоспоры (обычно 4) в результате мейоза. Базидии могут быть голобазидиями (неразделёнными) или фрагмобазидиями (разделёнными перегородками) (Webster & Weber, 2007).

Мицелий базидиомицетов септированный, с долипоровыми септами (характерный признак). Для многих базидиомицетов характерны пряжки (clamp connections) — специальные структуры, обеспечивающие распределение ядер при делении (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Значение для агросферы: Базидиомицеты включают:

  • Ржавчинные грибы (Pucciniales) — стеблевая ржавчина пшеницы, ржавчина кофе, сои, льна;
  • Головнёвые грибы (Ustilaginales) — головня кукурузы, пшеницы, ячменя;
  • Rhizoctonia solani — ризоктониоз (корневые и стеблевые гнили);
  • Armillaria — опёнок, паразит деревьев и кустарников;
  • Эктомикоризные грибы — белый гриб (Boletus), подберёзовик (Leccinum), лисичка (Cantharellus), маслёнок (Suillus);
  • Редуценты — шляпочные грибы, разрушители древесины;
  • Пищевые виды — шампиньон (Agaricus bisporus), вешенка (Pleurotus), шиитаке (Lentinula edodes) (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

2.4. «Грибы» в широком смысле: оомицеты и другие псевдогрибы

До сих пор мы говорили о настоящих грибах (Eumycota), которые составляют царство Fungi. Однако в агрономической практике и в фитопатологии под «грибами» часто понимают более широкую группу организмов, включающую также оомицеты (Oomycota) и некоторых других грибоподобных протистов (Сокирко, 2019).

Оомицеты — это отдельная группа в царстве Chromista (Stramenopila). Они внешне похожи на грибы: имеют мицелий, всасывают питательные вещества, размножаются спорами. Однако их клеточная стенка содержит целлюлозу, а не хитин; жгутики зооспор гетероконтные (один гладкий, другой перистый); митохондриальные кристы трубчатые, а не пластинчатые (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

К оомицетам относятся:

  • Phytophthora infestans — возбудитель фитофтороза картофеля и томата;
  • Pythium — возбудитель корневых гнилей, чёрной ножки, выпревания;
  • Plasmopara viticola — милдью винограда;
  • Peronospora — ложная мучнистая роса (табака, лука, сои);
  • Albugo candida — белая ржавчина крестоцветных (Сокирко, 2019; Agrios, 2005).

Оомицеты не являются грибами в строгом филогенетическом смысле, но изучаются вместе с ними в силу экологического и агрономического сходства. В нашем курсе мы будем рассматривать их отдельно, но в рамках общего модуля «Микроорганизмы агросферы» (Сокирко, 2019).

Кроме оомицетов, к «грибоподобным» организмам относятся:

  • Myxomycota (слизевики) — сапротрофы, не патогены растений;
  • Plasmodiophoromycota — внутриклеточные паразиты растений, включая Plasmodiophora brassicae — возбудителя килы крестоцветных (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007).

Эти группы также рассматриваются в нашем курсе, так как они вызывают болезни сельскохозяйственных культур.

2.5. Dikarya: объединение аскомицетов и базидиомицетов

Важным этапом в современной систематике грибов стало выделение подцарства Dikarya (двуядерные грибы), которое объединяет Ascomycota и Basidiomycota (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Общие признаки Dikarya:

  • Септированный мицелий с порами;
  • Длительный дикариотический этап — стадия, когда в клетке присутствуют два генетически различных ядра, которые делятся синхронно, но не сливаются;
  • Пряжки (clamp connections) у базидиомицетов и крючки (crozers) у аскомицетов — структуры, обеспечивающие правильное распределение ядер при делении;
  • Аскокарпы и базидиокарпы — сложные плодовые тела;
  • Конидии — бесполые споры, образующиеся экзогенно (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Считается, что Dikarya произошли от общего предка примерно 400–600 млн лет назад (Webster & Weber, 2007). Это самая молодая и наиболее эволюционно продвинутая группа грибов.

2.6. Значение современной классификации для агронома

Почему агроному важно знать современную классификацию грибов? Есть несколько причин.

1. Точная диагностика. Определение систематического положения возбудителя — обязательный этап диагностики болезни. Разные группы грибов требуют разных подходов к защите. Например, оомицеты (Phytophthora, Pythium) не чувствительны к большинству азолов и стробилуринов, которые эффективны против настоящих грибов. Для борьбы с ними нужны специальные фунгициды (металаксил, манкоцеб) (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

2. Прогноз развития болезней. Знание жизненного цикла возбудителя (наличие покоящихся стадий, источники инфекции, условия для спороношения) позволяет прогнозировать развитие эпифитотий. Например, Sclerotinia sclerotiorum образует склероции, сохраняющиеся в почве до 7 лет; Claviceps purpurea — склероции, которые прорастают весной в стромы с перитециями (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

3. Выбор стратегии защиты. Разные группы грибов имеют разную чувствительность к фунгицидам, разные механизмы устойчивости, разные экологические ниши. Например, Botrytis cinerea быстро развивает резистентность к системным фунгицидам, поэтому требуется ротация препаратов с разными механизмами действия (Agrios, 2005).

4. Использование полезных грибов. Знание систематики позволяет идентифицировать микоризные грибы (Glomeromycota, Basidiomycota), энтомопатогены (Beauveria, Metarhizium — Ascomycota), антагонисты (Trichoderma — Ascomycota) и использовать их в биоконтроле и биоудобрениях (Lambers & Oliveira, 2019; Webster & Weber, 2007).

5. Понимание микотоксинов. Разные группы грибов продуцируют разные микотоксины. Aspergillus flavus — афлатоксины; Fusarium — фумонизины, дезоксиниваленол (DON), зеараленон; Claviceps purpurea — эргоалкалоиды; Penicillium — патулин, охратоксин (Agrios, 2005; Raven et al., 2013). Знание систематики помогает прогнозировать риск загрязнения продукции.

2.7. Заключение

Подведём итоги второй лекции.

Современная классификация грибов основана на молекулярно-филогенетических данных, которые радикально перестроили традиционную систему. Отказ от Zygomycota как единой группы и выделение Mucoromycota, Glomeromycota, Entomophthoromycota и других фил — важнейший шаг к естественной системе.

Основные филы царства Fungi:

  • Chytridiomycota, Blastocladiomycota, Neocallimastigomycota — базальные группы, сохранившие жгутиковые стадии (кроме Neocallimastigomycota, у которых жгутики множественные);
  • Microsporidia — паразиты животных, включая пчёл;
  • Glomeromycota — арбускулярные микоризные грибы;
  • Mucoromycota — мукоровые грибы, сапротрофы и патогены;
  • Ascomycota и Basidiomycota — крупнейшие филы, объединяемые в Dikarya.

Оомицеты (Oomycota) — не грибы, а отдельная группа в царстве Chromista, но изучаются вместе с грибами из-за экологического и агрономического сходства.

Знание систематики необходимо агроному для точной диагностики болезней, выбора стратегии защиты растений, использования полезных грибов и прогнозирования рисков микотоксинов.

3. Ascomycota (сумчатые грибы)

Ascomycota — крупнейшая фила царства Fungi, включающая, по разным оценкам, от 32 000 до 64 000 описанных видов, что составляет более половины всех известных грибов (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013). Эти грибы распространены повсеместно — от почвы и растительных остатков до пресных вод и морских местообитаний. Они играют ключевую роль в биосфере как редуценты, симбионты, паразиты и патогены.

Для агронома Ascomycota — это, пожалуй, самая важная группа грибов. Среди них — возбудители фузариозов, парши, спорыньи, склеротиниоза, серой гнили, альтернариозов, антракнозов, пирикуляриоза риса и многих других болезней. В то же время аскомицеты — это дрожжи, продуценты антибиотиков, ферментов, органических кислот, а также энтомопатогены, используемые для биоконтроля насекомых-вредителей (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

В этой лекции мы подробно разберём морфологию, жизненные циклы и практическое значение важнейших представителей Ascomycota. Мы увидим, что эта группа демонстрирует удивительное разнообразие жизненных стратегий — от облигатных биотрофов до сапротрофов, от одноклеточных дрожжей до сложно организованных плодовых тел.

3.1. Ключевые признаки Ascomycota

Название «Ascomycota» происходит от греческих слов askos (сумка, мешок) и mykes (гриб). Главный отличительный признак этой группы — аск (сумка) — специализированная клетка, в которой в результате мейоза образуются аскоспоры (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Рассмотрим основные признаки аскомицетов подробнее.

Аск и аскоспоры. Аск — это клетка, внутри которой после слияния ядер (кариогамии) происходит мейоз, а затем митоз, в результате чего обычно образуется восемь гаплоидных аскоспор (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996). Число аскоспор может варьировать: у некоторых видов их четыре (Neurospora tetrasperma), у других — более восьми (до нескольких сотен у некоторых тропических видов). Аски могут быть голыми (у дрожжей) или заключёнными в аскокарпы (плодовые тела) (Webster & Weber, 2007).

Аскокарпы. Выделяют четыре основных типа аскокарпов (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996):

  • Гимнотеций — открытое сплетение гиф, не полностью enclosing аски (например, у Gymnoascus);
  • Клейстотеций — полностью закрытое плодовое тело шаровидной формы (например, у Erysiphe, Aspergillus);
  • Перитеций — кувшиновидное плодовое тело с отверстием (остиолой) для выхода аскоспор (например, у Sordaria, Neurospora, Claviceps);
  • Апотеций — открытое чашевидное или блюдцевидное плодовое тело (например, у Morchella, Peziza, Sclerotinia).

Мицелий. Мицелий аскомицетов септированный, с простыми порами в септах. Через поры могут проходить органеллы и даже ядра. Характерная особенность — наличие телец Воронина (Woronin bodies) — белковых органелл, которые закупоривают поры при повреждении гифы (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Конидии. Бесполое размножение у большинства аскомицетов осуществляется конидиями — экзогенными спорами, которые образуются на специализированных гифах — конидиеносцах. Конидии могут формироваться:

  • Свободно на мицелии (например, у Alternaria, Cladosporium);
  • В спорангиях (например, у Aspergillus, Penicillium — фиалиды);
  • В пикнидиях — flask-образных плодовых телах (например, у Septoria, Phoma);
  • В ацервулах — плоских подушечках (например, у Colletotrichum).

Дрожжи. Некоторые аскомицеты (Saccharomyces, Candida) существуют в одноклеточной дрожжевой форме, размножаясь почкованием или делением. Дрожжи не образуют мицелия, но при определённых условиях могут формировать псевдогифы (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Дикариотический этап. Для Ascomycota, как и для Basidiomycota, характерен дикариотический этап — стадия, когда в клетке присутствуют два генетически различных ядра, которые делятся синхронно, но не сливаются. У аскомицетов этот этап короткий и связан с образованием аскогенных гиф внутри аскокарпа (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

3.2. Жизненный цикл Ascomycota

Жизненный цикл аскомицетов включает половую и бесполую стадии. Рассмотрим его на примере типичного представителя — Pyronema omphaloides (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Бесполая стадия (анаморфа). Аскоспора прорастает, образуя гаплоидный мицелий. На мицелии формируются конидиеносцы с конидиями, которые распространяются воздушными потоками, дождём или насекомыми. Конидии, попав на подходящий субстрат, прорастают и дают начало новому мицелию. Бесполая стадия может повторяться многократно в течение вегетационного сезона, обеспечивая быстрое накопление инфекции (Webster & Weber, 2007).

Половой процесс. При наступлении определённых условий (истощение питательных веществ, изменение температуры, влажности) мицелий переходит к половому размножению. Формируются гаметангии:

  • Аскогоний — женский гаметангий, часто с трихогиной (выростом для восприятия мужских ядер);
  • Антеридий — мужской гаметангий.

Ядра из антеридия через трихогину мигрируют в аскогоний. Происходит плазмогамия (слияние цитоплазмы), но не кариогамия (слияние ядер). Аскогоний образует аскогенные гифы, клетки которых содержат дикарионы (пары ядер). На концах аскогенных гиф формируются крючки (crozers), обеспечивающие правильное распределение ядер при делении. Конечная клетка крючка становится аском (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

В аске происходит кариогамия — слияние двух ядер с образованием диплоидного ядра. Затем следует мейоз, дающий четыре гаплоидных ядра, и митоз, в результате которого образуется восемь гаплоидных ядер. Каждое ядро окружается цитоплазмой и покрывается оболочкой — формируются аскоспоры (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Аскоспоры освобождаются из аска (активно выбрасываются или пассивно освобождаются при разрушении аскокарпа) и, попав в подходящие условия, прорастают, давая начало новому гаплоидному мицелию. Цикл замыкается.

3.3. Патогенные Ascomycota

Ascomycota включают огромное число фитопатогенов, наносящих серьёзный ущерб сельскому хозяйству. Рассмотрим важнейших представителей.

Fusarium — фузариозы

Fusarium — один из самых значимых родов фитопатогенных грибов. Виды Fusarium вызывают фузариозные увядания, корневые и прикорневые гнили, фузариоз колоса (FHB — Fusarium head blight), гнили клубней, плодов и семян (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Морфология. Fusarium образует серповидные макроконидии с несколькими поперечными перегородками (обычно 3–5), микроконидии (одно- или двуклеточные), а также хламидоспоры — толстостенные покоящиеся споры, сохраняющиеся в почве годами (Agrios, 2005).

Заболевания.

  • Фузариозное увядание томата (Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici) — патоген проникает через корни, закупоривает ксилему, вызывая увядание и гибель растений. На срезе стебля видно побурение сосудов (Agrios, 2005).
  • Фузариоз колоса пшеницы и ячменя (Fusarium graminearum, син. Gibberella zeae) — поражает колос, вызывает преждевременное отбеливание колосков, щуплость зерна. Заражённое зерно содержит микотоксины (дезоксиниваленол, зеараленон), опасные для человека и животных (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).
  • Фузариозная гниль кукурузы (Fusarium verticillioides, F. proliferatum) — вызывает гниль початков, накапливает фумонизины (Agrios, 2005).
  • Фузариоз бананов (Fusarium oxysporum f. sp. cubense) — панамская болезнь, уничтожившая плантации сорта Gros Michel в Центральной Америке в 1950-х годах. Новые штаммы угрожают сорту Cavendish (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

Биология. Fusarium — почвенный гриб, сохраняющийся в виде хламидоспор в растительных остатках и почве. Распространяется с заражёнными семенами, посадочным материалом, водой, сельскохозяйственной техникой. Заболевание усиливается при высокой температуре почвы, монокультуре, уплотнении почвы (Agrios, 2005).

Контроль. Устойчивые сорта, севооборот, обработка семян фунгицидами, биоконтроль (Trichoderma, Pseudomonas) (Agrios, 2005).

Venturia — парша яблони

Venturia inaequalis — возбудитель парши яблони, одной из самых серьёзных болезней этой культуры. Заболевание распространено повсеместно, где выращивают яблоки, особенно в регионах с прохладной влажной весной (Agrios, 2005).

Симптомы. На листьях появляются оливково-зелёные, затем чёрные бархатистые пятна. На плодах — тёмные, пробковые, растрескивающиеся пятна, снижающие товарное качество. При сильном поражении наблюдается преждевременное опадание листьев и мелкоплодность (Agrios, 2005).

Морфология. Venturia образует псевдотеции (аскокарпы локулоаскомицетного типа) в опавших листьях. Аскоспоры выбрасываются весной и заражают молодые листья. Бесполая стадия — Spilocaea pomi (конидиальная) — образует конидии на поверхности листьев и плодов в течение сезона (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Жизненный цикл. Гриб зимует в опавших листьях в виде псевдотециев. Весной, во время дождя, аскоспоры выбрасываются и переносятся ветром на молодые листья. После заражения появляются конидиальные пятна, которые служат источником вторичной инфекции в течение лета (Agrios, 2005).

Контроль. Устойчивые сорта, удаление опавших листьев, применение фунгицидов (стробилурины, DMI-фунгициды) в период первичного заражения (Agrios, 2005).

Claviceps — спорынья

Claviceps purpurea — возбудитель спорыньи злаков, одного из самых известных и опасных микотоксикозов в истории человечества. Заболевание поражает рожь, пшеницу, ячмень, овёс и многие дикие злаки (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Симптомы. На колосьях вместо зёрен образуются тёмно-фиолетовые рожки — склероции гриба. Они содержат эргоалкалоиды — токсичные вещества, вызывающие эрготизм (антонов огонь) у людей и животных. Симптомы эрготизма: гангрена конечностей, судороги, галлюцинации, аборты (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

Жизненный цикл. Склероции зимуют в почве или с семенами. Весной они прорастают, образуя стромы с перитециями. Аскоспоры заражают цветки злаков. В завязи развивается конидиальная стадия (Sphacelia), выделяющая медвяную росу — сладкую жидкость с конидиями, которую разносят насекомые. Затем формируется склероций, который заменяет зерно (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Контроль. Очистка семян от склероциев, севооборот, глубокая вспашка, устойчивые сорта (Agrios, 2005).

Медицинское значение. Эргоалкалоиды используются в медицине: эргометрин — для остановки маточных кровотечений, эрготамин — для лечения мигрени. ЛСД (диэтиламид лизергиновой кислоты) — синтетическое производное алкалоидов спорыньи (Raven et al., 2013).

Sclerotinia — склеротиниоз

Sclerotinia sclerotiorum — возбудитель белой гнили (склеротиниоза) более 400 видов растений, включая подсолнечник, сою, рапс, морковь, салат, фасоль, горох (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Симптомы. На стеблях, листьях, плодах появляются водянистые, бурые пятна, покрывающиеся белым ватообразным мицелием. Внутри и на поверхности тканей формируются чёрные склероции. Растения увядают и погибают (Agrios, 2005).

Жизненный цикл. Склероции зимуют в почве до 7 лет. Весной они прорастают, образуя апотеции с аскоспорами. Аскоспоры заражают растения. В течение сезона возможно контактное распространение мицелия от растения к растению (Agrios, 2005).

Контроль. Севооборот с невосприимчивыми культурами, глубокая вспашка, биоконтроль (Coniothyrium minitans), фунгициды (Agrios, 2005).

Botrytis — серая гниль

Botrytis cinerea — возбудитель серой гнили более 200 видов растений, включая виноград, землянику, томат, огурцы, розы, лилии (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Симптомы. На поражённых тканях появляется серый пушистый налёт (конидиальное спороношение). Ткани размягчаются, буреют, загнивают. Болезнь особенно опасна при высокой влажности и пониженной температуре (Agrios, 2005).

Морфология. Botrytis образует древесные конидиеносцы с гроздевидными скоплениями конидий. Также формирует склероции для переживания неблагоприятных условий (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Контроль. Удаление растительных остатков, снижение влажности, фунгициды, биоконтроль (Trichoderma, Bacillus subtilis) (Agrios, 2005).

Виноделие. Botrytis cinerea — возбудитель «благородной гнили» винограда, которая используется для производства десертных вин (сотерн, токай). Гриб концентрирует сахара и придаёт вину характерный вкус (Raven et al., 2013).

Alternaria — альтернариозы

Alternaria solani — возбудитель ранней гнили (альтернариоза) картофеля и томата. Alternaria alternata — возбудитель чёрной гнили плодов, листьев, семян многих культур (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

Симптомы. На листьях — тёмно-бурые пятна с концентрическими кольцами (target spot). На плодах — тёмные, slightly sunken lesions. На клубнях картофеля — сухая, тёмная гниль (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

Морфология. Alternaria образует тёмные, многоклеточные конидии с поперечными и продольными перегородками, часто булавовидной формы (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Контроль. Устойчивые сорта, севооборот, фунгициды (QoI, SDHI), но отмечена резистентность к этим группам (Campos & Ortiz, 2020).

Colletotrichum — антракнозы

Colletotrichum — возбудитель антракнозов многих культур: фасоль, тыквенные, перец, томат, лук, земляника, кофе, манго, папайя (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Симптомы. Тёмные, вдавленные пятна на листьях, стеблях, плодах. На плодах — чёрные, слегка вдавленные lesions с розовыми массами спор в центре (Agrios, 2005).

Морфология. Colletotrichum образует ацервулы — плоские подушечки с конидиеносцами, часто с щетинками (setae). Конидии — одноклеточные, цилиндрические, слегка изогнутые (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Телеоморфа: Glomerella cingulata (Ascomycota, Phyllachorales) (Webster & Weber, 2007).

Контроль. Устойчивые сорта, севооборот, фунгициды (беномил, каптан), биоконтроль (Agrios, 2005).

Magnaporthe — пирикуляриоз риса

Magnaporthe oryzae (син. M. grisea) — возбудитель пирикуляриоза риса, одной из самых разрушительных болезней этой культуры. Ежегодно потери риса от пирикуляриоза составляют 10–30%, а в отдельные годы — до 50–90% (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Симптомы. На листьях — ромбовидные, серо-коричневые пятна с бурой каймой. На стеблях — чёрные некрозы, вызывающие полегание. На метёлках — пустозёрность (Agrios, 2005).

Морфология. Конидии Pyricularia oryzae — грушевидные, трёхклеточные. Гриб образует аппрессории, способные проникать через кутикулу (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Жизненный цикл. Патоген зимует в растительных остатках и семенах. Конидии распространяются ветром и дождём. Заболевание усиливается при высокой влажности, высоких дозах азотных удобрений, загущенности посевов (Agrios, 2005).

Контроль. Устойчивые сорта, сбалансированное азотное питание, фунгициды (Agrios, 2005).

3.4. Полезные Ascomycota

Ascomycota — не только патогены, но и важнейшие полезные грибы, используемые в пищевой, фармацевтической и биотехнологической промышленности.

Saccharomyces — дрожжи

Saccharomyces cerevisiae — пекарские дрожжи, одноклеточные грибы, используемые в хлебопечении, виноделии, пивоварении, производстве спирта (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Морфология. Дрожжи размножаются почкованием. При недостатке питательных веществ образуют аски с аскоспорами (обычно 4) (Raven et al., 2013).

Биохимия. Сбраживают сахара в этанол и CO2. В хлебопечении CO2 поднимает тесто; в пивоварении и виноделии этанол — целевой продукт (Raven et al., 2013).

Генетика. S. cerevisiae — модельный объект молекулярной биологии. Первый эукариот, чей геном был полностью секвенирован (Raven et al., 2013).

Penicillium — пенициллин и сыры

Penicillium — род аскомицетов, включающий продуцентов антибиотиков и грибы, используемые в сыроварении (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Penicillium chrysogenum — продуцент пенициллина, первого антибиотика, открытого Александром Флемингом в 1928 году. Пенициллин спас миллионы жизней (Raven et al., 2013).

Penicillium roqueforti — используется для производства Roquefort, Danish blue, Stilton, Gorgonzola. Penicillium camemberti — для Camembert и Brie (Raven et al., 2013).

Морфология. Конидиеносцы кистевидные (penicillus — кисть), с фиалидами, образующими цепочки конидий (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Aspergillus — ферменты и микотоксины

Aspergillus — род аскомицетов, включающий как полезные, так и опасные виды (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Полезные:

  • Aspergillus oryzae — ферментация сои (соевый соус, мисо), саке;
  • Aspergillus niger — продуцент лимонной кислоты, ферментов (амилазы, протеазы, целлюлазы) (Raven et al., 2013).

Опасные:

  • Aspergillus flavus, A. parasiticus — продуценты афлатоксинов, канцерогенных микотоксинов, поражающих арахис, кукурузу, пшеницу. Афлатоксины — одни из самых сильных канцерогенов (Raven et al., 2013; Agrios, 2005);
  • Aspergillus fumigatus — возбудитель аспергиллёза у людей с ослабленным иммунитетом (Raven et al., 2013).

Морфология. Конидиеносцы булавовидные, с фиалидами, образующими радиальные головки конидий (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Сморчки и трюфели

Morchella (сморчки) и Tuber (трюфели) — съедобные аскомицеты, высоко ценимые гурманами (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Morchella образует апотеции характерной сморчковой формы (Raven et al., 2013).

Tuber образует подземные аскокарпы, которые ищут с помощью собак или свиней. Трюфели — эктомикоризные симбионты дуба, бука, лещины (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

3.5. Энтомопатогенные Ascomycota

Некоторые аскомицеты являются патогенами насекомых и используются для биологического контроля вредителей.

Beauveria bassiana

Beauveria bassiana — энтомопатогенный гриб, заражающий более 700 видов насекомых, включая колорадского жука, тлю, белокрылку, трипсов (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Морфология. Образует белые пушистые колонии, конидии шаровидные, на зигзагообразных конидиеносцах (Webster & Weber, 2007).

Механизм. Конидии прилипают к кутикуле насекомого, прорастают, проникают в тело, вызывая микоз и гибель. Гриб выделяет токсины (бовеверицин) (Webster & Weber, 2007).

Применение. Микоинсектициды на основе B. bassiana (например, BotaniGard, Mycotrol) (Raven et al., 2013).

Metarhizium anisopliae

Metarhizium anisopliae — энтомопатогенный гриб, используемый против саранчи, кузнечиков, термитов, клещей (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Морфология. Образует тёмно-зелёные колонии, конидии цилиндрические, в цепочках (Webster & Weber, 2007).

Применение. Биоинсектициды (например, Green Muscle против саранчи) (Raven et al., 2013).

3.6. Практическое значение Ascomycota для агронома

Ascomycota имеют огромное значение для сельского хозяйства. Их роль многогранна:

1. Фитопатогены. Ascomycota — главные возбудители болезней растений. Они вызывают фузариозы, паршу, спорынью, склеротиниоз, серую гниль, альтернариозы, антракнозы, пирикуляриоз и многие другие заболевания. Потери урожая от этих болезней достигают 10–30%, а в отдельные годы — 50–90% (Agrios, 2005).

2. Микотоксины. Многие аскомицеты продуцируют микотоксины, опасные для человека и животных:

  • Афлатоксины (Aspergillus flavus) — канцерогены;
  • Фумонизины (Fusarium moniliforme) — нейротоксины;
  • Дезоксиниваленол (DON) (Fusarium graminearum) — иммуносупрессант;
  • Эргоалкалоиды (Claviceps purpurea) — гангрена, галлюцинации (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

3. Биоконтроль. Trichoderma (Ascomycota) — антагонист фитопатогенов, используется для биоконтроля корневых гнилей. Beauveria, Metarhizium — энтомопатогены, используются для биоконтроля насекомых (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

4. Пищевая промышленность. Saccharomyces (хлеб, вино, пиво), Penicillium (сыры), Aspergillus (соевый соус, лимонная кислота), Morchella, Tuber (деликатесы) (Raven et al., 2013).

5. Фармацевтика. Penicillium (пенициллин), Tolypocladium inflatum (циклоспорин — иммуносупрессант для трансплантации органов) (Raven et al., 2013).

6. Научные исследования. Saccharomyces cerevisiae, Neurospora crassa, Aspergillus nidulans — модельные объекты генетики, молекулярной биологии, клеточной биологии (Raven et al., 2013; Alexopoulos et al., 1996).

3.7. Заключение

Ascomycota — крупнейшая и наиболее разнообразная фила царства Fungi. Их ключевой признак — аск с аскоспорами, образующимися в результате мейоза. Аскомицеты имеют септированный мицелий с простыми порами и тельцами Воронина, размножаются конидиями и образуют аскокарпы четырёх типов.

Среди Ascomycota — важнейшие фитопатогены (Fusarium, Venturia, Claviceps, Sclerotinia, Botrytis, Alternaria, Colletotrichum, Magnaporthe), полезные виды (Saccharomyces, Penicillium, Aspergillus, сморчки, трюфели) и энтомопатогены (Beauveria, Metarhizium).

Для агронома знание Ascomycota необходимо для диагностики болезней, выбора стратегии защиты, прогнозирования рисков микотоксинов и использования полезных грибов в биоконтроле и биотехнологии.

В следующей лекции мы рассмотрим Basidiomycota — вторую по величине филу грибов, включающую ржавчинные, головнёвые, шляпочные грибы, эктомикоризные симбионты и редуценты древесины.

Буквоед

4. Basidiomycota (базидиальные грибы)

Введение

Basidiomycota — вторая по величине фила царства Fungi, включающая, по разным оценкам, от 22 300 до 30 000 описанных видов (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013). Если Ascomycota — это прежде всего «грибы-патогены» и «грибы-плесени», то Basidiomycota — это в первую очередь шляпочные грибы, трутовики, ржавчинные и головнёвые грибы, а также важнейшие эктомикоризные симбионты.

Для агронома Basidiomycota имеют огромное значение по нескольким причинам. С одной стороны, среди них — разрушители урожая (ржавчина, головня, ризоктониоз, опёнок), с другой — незаменимые симбионты, без которых невозможно нормальное развитие многих древесных пород, и редуценты, разлагающие древесину и растительные остатки. Кроме того, Basidiomycota — это источник пищевых продуктов (шампиньоны, вешенки, шиитаке) и биологически активных соединений (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

В этой лекции мы подробно разберём морфологию, жизненные циклы и практическое значение важнейших представителей Basidiomycota.

4.1. Ключевые признаки Basidiomycota

Название «Basidiomycota» происходит от греческих слов basis (основание, база) и mykes (гриб). Главный отличительный признак этой группы — базидия — специализированная клетка, на которой экзогенно образуются базидиоспоры в результате мейоза (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Рассмотрим основные признаки базидиомицетов подробнее.

Базидия и базидиоспоры. Базидия — это клетка, в которой происходит кариогамия (слияние ядер) и мейоз, после чего образуются обычно четыре гаплоидные базидиоспоры (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996). Базидиоспоры располагаются на стеригмах — тонких выростах базидии, и отбрасываются активно с помощью поверхностно-натяжного катапультного механизма (Buller's drop mechanism). Базидии могут быть:

  • Голобазидии — не разделены перегородками (у шляпочных грибов, трутовиков);
  • Фрагмобазидии — разделены поперечными или продольными перегородками (у ржавчинных, головнёвых, дрожалковых грибов) (Webster & Weber, 2007).

Долипоровые септы. Мицелий базидиомицетов септированный, но септы имеют долипоровую структуру — центральную пору, окружённую бочонковидным расширением, прикрытым с обеих сторон парентесомами (мембранными колпачками). Это характернейший признак Basidiomycota, отличающий их от Ascomycota с простыми порами (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Пряжки (clamp connections). У многих базидиомицетов на дикариотическом мицелии образуются пряжки — специальные структуры, обеспечивающие правильное распределение двух генетически различных ядер при делении клетки. Пряжка формируется как боковой вырост гифы, в который мигрирует одно из ядер, затем происходит синхронное деление обоих ядер, и дочерние ядра распределяются в дочерние клетки. Пряжки — гомологичны крючкам (crozers) аскомицетов (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Дикариотический этап. Для Basidiomycota характерен длительный дикариотический этап — стадия, когда в клетке присутствуют два генетически различных ядра, которые делятся синхронно, но не сливаются. У базидиомицетов этот этап доминирует в жизненном цикле: именно дикариотический мицелий формирует плодовые тела (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Плодовые тела (базидиокарпы). Базидиомицеты образуют базидиокарпы — сложно организованные плодовые тела, состоящие из плектенхимы (ложной ткани). Базидиокарпы могут быть:

  • Гимениальные — с открытым гимением (шляпочные грибы, трутовики);
  • Гастероидные — с закрытым гимением (дождевики, весёлки, гнёздовки) (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Гимений. Гимений — спороносный слой, состоящий из базидий и цистид (стерильных элементов). У шляпочных грибов гимений выстилает пластинки (агарикоидные), трубочки (полипороидные), шипы (гидноидные) или складки (кантареллоидные) (Webster & Weber, 2007).

4.2. Жизненный цикл Basidiomycota

Жизненный цикл базидиомицетов включает гаплоидную, дикариотическую и диплоидную стадии, причём дикариотическая стадия доминирует (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Гаплоидная стадия. Базидиоспора прорастает, образуя гаплоидный мицелий (первичный мицелий). У большинства базидиомицетов гаплоидный мицелий короткоживущий и не образует плодовых тел. У некоторых видов (например, у головнёвых) гаплоидная стадия может существовать в виде дрожжеподобных клеток (споридий), способных к сапротрофному росту (Webster & Weber, 2007).

Плазмогамия и дикариотизация. Когда два совместимых гаплоидных мицелия встречаются, происходит плазмогамия (слияние цитоплазмы), но не кариогамия. Образуется дикариотический мицелий (вторичный мицелий), клетки которого содержат пары ядер (дикарионы). Дикариотический мицелий растёт и формирует плодовые тела (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Кариогамия и мейоз. В базидиях, образующихся на дикариотическом мицелии, происходит кариогамия — слияние двух ядер с образованием диплоидного ядра. Затем следует мейоз, дающий четыре гаплоидных ядра, которые мигрируют в базидиоспоры (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Распространение базидиоспор. Базидиоспоры активно отбрасываются с базидии на расстояние до 0,1–0,2 мм с помощью поверхностно-натяжного катапультного механизма (Buller's drop). Затем они подхватываются воздушными потоками и распространяются на большие расстояния. Попав в подходящие условия, базидиоспоры прорастают, и цикл замыкается (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

4.3. Патогенные Basidiomycota

Basidiomycota включают ряд опаснейших фитопатогенов, наносящих огромный ущерб сельскому хозяйству. Рассмотрим важнейших представителей.

Ржавчинные грибы (Pucciniales)

Ржавчинные грибы — порядок Pucciniales (класс Pucciniomycetes), включающий около 8000 видов — облигатных биотрофных паразитов растений. Ржавчина поражает зерновые, бобовые, технические, овощные, плодовые, декоративные культуры, а также древесные породы (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Симптомы. На поражённых органах появляются оранжевые, жёлтые, бурые или чёрные pustules (пустулы), содержащие массы спор. Пустулы могут быть порошащими (уредо- и телиопустулы) или восковидными (эции). Сильное поражение приводит к угнетению роста, снижению урожая, полеганию (Agrios, 2005).

Морфология. Ржавчинные грибы образуют фрагмобазидии (телиоспоры, прорастающие в базидию). Они имеют сложный жизненный цикл с пятью типами спор:

  • Спермации (пикниоспоры) — гаплоидные, образуются в спермогониях;
  • Эциоспоры — дикариотические, образуются в эциях;
  • Уредоспоры — дикариотические, образуются в урединиях (повторное заражение);
  • Телиоспоры — дикариотические, образуются в телиях (покоящиеся);
  • Базидиоспоры — гаплоидные, образуются на базидиях (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Жизненные циклы. Ржавчинные грибы демонстрируют разные типы жизненных циклов:

  • Макроциклические — все пять типов спор (например, Puccinia graminis);
  • Микроциклические — только телиоспоры и базидиоспоры (например, некоторые виды);
  • Гетероциклические — смена хозяев (например, Puccinia graminis: пшеница и барбарис);
  • Автоциклические — один хозяин (например, Puccinia asparagi) (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Важнейшие представители:

  • Puccinia graminis — стеблевая ржавчина пшеницы, один из самых опасных патогенов зерновых. Промежуточный хозяин — барбарис. Ежегодные потери достигают миллионов тонн зерна (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007);
  • Puccinia striiformis — жёлтая (полосчатая) ржавчина пшеницы;
  • Puccinia triticina — бурая (листовая) ржавчина пшеницы;
  • Puccinia hordei — карликовая ржавчина ячменя;
  • Puccinia coronata — королевская ржавчина овса;
  • Puccinia sorghi — ржавчина кукурузы;
  • Uromyces appendiculatus — ржавчина фасоли;
  • Phakopsora pachyrhizi — ржавчина сои, чрезвычайно опасный патоген, распространившийся в последние десятилетия по всему миру. Потери урожая сои достигают 10–80% (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007);
  • Hemileia vastatrix — ржавчина кофе, уничтожившая плантации кофе в Азии и Африке, а с 1970-х годов распространившаяся в Южной и Центральной Америке (Webster & Weber, 2007);
  • Cronartium ribicola — пузырчатая ржавчина сосны (белой сосны), промежуточный хозяин — смородина и крыжовник (Webster & Weber, 2007);
  • Gymnosporangium juniperi-virginianae — ржавчина яблони и можжевельника (кедрово-яблонная ржавчина) (Webster & Weber, 2007).

Контроль. Устойчивые сорта (основной метод), уничтожение промежуточных хозяев (для гетероциклических ржавчин), фунгициды (триазолы, стробилурины), севооборот (Agrios, 2005).

Головнёвые грибы (Ustilaginales)

Головнёвые грибы — порядок Ustilaginales (класс Ustilaginomycetes), включающий около 1500 видов — паразитов цветковых растений, преимущественно злаков. Головня поражает кукурузу, пшеницу, ячмень, овёс, рожь, сорго, просо, сахарный тростник (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Симптомы. Поражённые органы (чаще зерновки, метёлки, початки) превращаются в чёрные, пылящие массы спор (телиоспор). Растения отстают в росте, метёлки деформируются. Термин «головня» отражает обугленный вид поражённых органов (Agrios, 2005).

Морфология. Головнёвые грибы образуют фрагмобазидии (телиоспоры, прорастающие в базидию). Жизненный цикл включает гаплоидную дрожжеподобную стадию (споридии) и дикариотическую мицелиальную стадию (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Важнейшие представители:

  • Ustilago maydis — головня кукурузы (пузырчатая головня). Образует крупные галлы на початках, стеблях, листьях. Потери урожая достигают 10%, а в отдельных полях — до 100%. В Мексике молодые галлы употребляют в пищу (уицлакоче) (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005);
  • Ustilago nuda, U. tritici — пыльная головня ячменя и пшеницы. Поражает эмбрион семени, проявляется на колосьях (Webster & Weber, 2007);
  • Ustilago hordei, U. avenae — твёрдая (каменная) головня ячменя и овса (Webster & Weber, 2007);
  • Tilletia caries, T. laevis — твёрдая (мокрая) головня пшеницы (вонючая головня). Зерновки превращаются в чёрные «головнёвые мешочки» с запахом триметиламина (селедочный запах). Потери урожая достигают 20–50% (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005);
  • Tilletia controversa — карликовая головня пшеницы (Webster & Weber, 2007);
  • Tilletia indica — карнальская головня пшеницы. Карантинный объект, вызывающий запрет на экспорт заражённого зерна (Webster & Weber, 2007);
  • Sporisorium scitamineum — головня сахарного тростника (Webster & Weber, 2007);
  • Urocystis tritici — стеблевая головня пшеницы (Webster & Weber, 2007).

Контроль. Обработка семян системными фунгицидами (карбоксин, тебуконазол), устойчивые сорта, севооборот, термическая обработка семян (Agrios, 2005).

Rhizoctonia solani — ризоктониоз

Rhizoctonia solani (телеоморфа — Thanatephorus cucumeris) — почвенный базидиомицет, вызывающий ризоктониоз — корневые и стеблевые гнили, чёрную паршу, выпревание многих культур, включая картофель, сахарную свёклу, морковь, томат, огурцы, хлопчатник, зерновые (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

Симптомы. На клубнях картофеля — чёрные склероции («чёрная парша»). На стеблях — бурые вдавленные lesions. На всходах — выпревание (damping-off). На корнеплодах — бурые гнили (Agrios, 2005).

Морфология. R. solani образует бурый септированный мицелий с пряжками (у некоторых штаммов), склероции и базидии с базидиоспорами. Анастомозные группы (AG) — AG1–AG13 — различаются по хозяевам и патогенности (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Контроль. Севооборот, обработка почвы, фунгициды (PCNB, флутоланил), биоконтроль (Trichoderma, Bacillus) (Agrios, 2005).

Armillaria — опёнок

Armillaria (опёнок) — род базидиомицетов, включающий паразитов и сапротрофов древесных пород. Armillaria mellea, A. ostoyae, A. gallica вызывают корневые и прикорневые гнили плодовых, лесных и декоративных деревьев (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Симптомы. Деревья отстают в росте, желтеют, увядают, погибают. Под корой — белые веерообразные плёнки мицелия. В почве — ризоморфы («шнуры»), тёмные, ветвящиеся, длиной до нескольких метров. Осенью — медово-жёлтые шляпочные грибы у основания стволов (Webster & Weber, 2007).

Биология. Armillaria — один из крупнейших организмов на Земле. Мицелий A. ostoyae в Орегоне занимает 900 га и имеет возраст более 2400 лет (Raven et al., 2013).

Контроль. Удаление пней и корней, севооборот, устойчивые подвои, биоконтроль (Trichoderma) (Agrios, 2005).

4.4. Симбиотические Basidiomycota: эктомикориза

Многие Basidiomycota образуют эктомикоризу (ectotrophic mycorrhiza) с корнями древесных пород — дуба, бука, берёзы, сосны, ели, лиственницы, ивы, тополя, эвкалипта (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Структура эктомикоризы. Гриб образует манжет (чехол) из гиф вокруг корня и сеть Гартига (Hartig net) между клетками коры. Гифы не проникают внутрь клеток (в отличие от арбускулярной микоризы). Эктомикориза изменяет морфологию корня: он утолщается, ветвится, теряет корневые волоски (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Функции эктомикоризы:

  • Улучшение питания: гифы увеличивают поглощающую поверхность, выделяют ферменты (протеазы, фосфатазы), разрушающие органические соединения, и карбоксилаты, мобилизующие фосфор из минералов (Lambers & Oliveira, 2019);
  • Защита от патогенов: манжет — физический барьер, гриб выделяет антибиотики (Lambers & Oliveira, 2019);
  • Устойчивость к стрессам: повышает засухоустойчивость, солеустойчивость (Lambers & Oliveira, 2019).

Важнейшие эктомикоризные Basidiomycota:

  • Boletus (белый гриб, боровик);
  • Leccinum (подберёзовик, подосиновик);
  • Suillus (маслёнок);
  • Cantharellus (лисичка);
  • Lactarius (груздь, рыжик);
  • Russula (сыроежка);
  • Amanita (мухомор, бледная поганка);
  • Tricholoma (рядовка, зелёнка);
  • Cortinarius (паутинник) (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Практическое использование. Инокуляция эктомикоризными грибами применяется в лесных питомниках для улучшения приживаемости и роста сеянцев сосны, ели, дуба. Микоризные препараты на основе Boletus edulis, Suillus luteus, Pisolithus tinctorius используются в лесовосстановлении и озеленении (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

4.5. Редуценты: шляпочные грибы и трутовики

Basidiomycota — главные редуценты древесины в лесных экосистемах. Они разлагают лигнин, целлюлозу, гемицеллюлозу с помощью оксидаз (лакказа, пероксидаза) и гидролаз (целлюлаза, ксиланаза) (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Типы гнилей:

  • Бурая гниль — разрушается целлюлоза, остаётся лигнин (бурый, хрупкий). Вызывается трутовиками (Serpula lacrymans, Laetiporus sulphureus) (Webster & Weber, 2007);
  • Белая гниль — разрушаются лигнин и целлюлоза (белая, волокнистая). Вызывается трутовиками (Trametes versicolor, Pleurotus ostreatus) (Webster & Weber, 2007).

Важнейшие редуценты:

  • Trametes versicolor — разноцветный трутовик, разрушитель мёртвой древесины;
  • Fomes fomentarius — трутовик настоящий, паразит и сапротроф берёзы;
  • Ganoderma applanatum — трутовик плоский, разрушитель древесины;
  • Serpula lacrymans — домовый гриб, разрушитель древесины в постройках (Webster & Weber, 2007);
  • Pleurotus ostreatus — вешенка, разрушитель древесины, съедобный гриб (Webster & Weber, 2007).

Экологическое значение. Basidiomycota-редуценты возвращают углерод и минеральные элементы в почву, поддерживают круговорот веществ в лесных экосистемах. Без них лесная подстилка не разлагалась бы, и углерод не возвращался бы в атмосферу (Raven et al., 2013).

4.6. Пищевые Basidiomycota

Многие Basidiomycota — съедобные грибы, культивируемые в промышленных масштабах.

Agaricus bisporus — шампиньон двуспоровый. Самый культивируемый гриб в мире. Производство — более 3,7 млн тонн в год (Raven et al., 2013). Выращивается на компосте из соломы и навоза.

Pleurotus ostreatus — вешенка обыкновенная. Культивируется на соломе, опилках, кукурузных кочерыжках. Содержит много белка, низкокалорийна (Raven et al., 2013).

Lentinula edodes — шиитаке. Традиционный японский гриб, культивируется на древесине дуба. Обладает лекарственными свойствами (противоопухолевые, иммуномодулирующие) (Raven et al., 2013).

Другие культивируемые виды:

  • Flammulina velutipes — опёнок зимний (энокитаке);
  • Volvariella volvacea — соломенный гриб;
  • Grifola frondosa — мейтаке (Raven et al., 2013).

Пищевая ценность. Грибы богаты белком (20–40% сухой массы), витаминами (B, D), минералами (K, P, Se), пищевыми волокнами. Низкокалорийны, содержат хитин, который не переваривается человеком, но стимулирует перистальтику (Raven et al., 2013).

4.7. Практическое значение Basidiomycota для агронома

Basidiomycota имеют огромное значение для сельского хозяйства. Их роль многогранна:

1. Фитопатогены. Basidiomycota — возбудители опаснейших болезней:

  • Ржавчины — стеблевая ржавчина пшеницы, ржавчина сои, ржавчина кофе. Потери урожая достигают 10–80% (Agrios, 2005);
  • Головни — головня кукурузы, твёрдая головня пшеницы, пыльная головня ячменя. Потери — 10–50% (Agrios, 2005);
  • Ризоктониоз — чёрная парша картофеля, корневые гнили (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020);
  • Опёнок — корневые гнили плодовых и лесных деревьев (Agrios, 2005).

2. Эктомикоризные симбионты. Basidiomycota образуют эктомикоризу с древесными породами, улучшая их питание, рост, устойчивость к стрессам. Инокуляция микоризными грибами применяется в лесных питомниках и озеленении (Lambers & Oliveira, 2019).

3. Редуценты. Basidiomycota разлагают древесину, листовой опад, возвращая углерод и минеральные элементы в почву. Они — основа круговорота веществ в лесных экосистемах (Raven et al., 2013).

4. Пищевые продукты. Шампиньоны, вешенки, шиитаке — ценные пищевые продукты, богатые белком, витаминами, минералами. Мировое производство — более 3,7 млн тонн в год (Raven et al., 2013).

5. Биоконтроль. Некоторые Basidiomycota (Pleurotus ostreatus) — хищники нематод, используются для биоконтроля (Webster & Weber, 2007).

6. Биоремедиация. Белые гнили (Trametes versicolor, Pleurotus ostreatus) разлагают ксенобиотики, пестициды, нефтепродукты, используются для очистки загрязнённых почв (Raven et al., 2013).

4.8. Заключение

Basidiomycota — вторая по величине фила царства Fungi, включающая шляпочные грибы, трутовики, ржавчинные, головнёвые, дрожалковые, гастеромицеты. Их ключевой признак — базидия с экзогенными базидиоспорами, образующимися в результате мейоза. Мицелий септированный, с долипоровыми септами, у многих — пряжки. Доминирует дикариотическая стадия.

Среди Basidiomycota — опаснейшие фитопатогены (Puccinia, Ustilago, Tilletia, Rhizoctonia, Armillaria), незаменимые эктомикоризные симбионты (Boletus, Suillus, Cantharellus, Lactarius), редуценты древесины (Trametes, Fomes, Ganoderma), пищевые грибы (Agaricus, Pleurotus, Lentinula).

Для агронома знание Basidiomycota необходимо для диагностики болезней, выбора стратегии защиты, использования микоризных препаратов и понимания экологических функций грибов в агроценозах.

5. Glomeromycota и микориза

Введение

В предыдущих лекциях мы познакомились с двумя крупнейшими филами царства Fungi — Ascomycota и Basidiomycota. Однако существует ещё одна группа грибов, которая по своему значению для агросферы не уступает им, а по масштабам влияния на продуктивность растений, пожалуй, превосходит. Речь идёт о Glomeromycota — филе грибов, все представители которой образуют арбускулярную микоризу (AM) с корнями подавляющего большинства сельскохозяйственных культур (Lambers & Oliveira, 2019; Webster & Weber, 2007).

Микориза (от греч. mykes — гриб и rhiza — корень) — это симбиотическая ассоциация между грибом и корнем растения. Термин был введён в 1885 году немецким ботаником Альбертом Бернардом Франком для описания взаимовыгодного сожительства гриба и корня. Сегодня мы знаем, что микориза — не исключение, а правило в растительном мире: около 85–90% всех сосудистых растений образуют микоризу с грибами (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Для агронома знание микоризы необходимо по нескольким причинам. Во-первых, микоризные грибы улучшают питание растений, особенно фосфорное, что позволяет снижать дозы удобрений. Во-вторых, они повышают устойчивость растений к засухе, засолению, патогенам. В-третьих, микориза влияет на структуру почвы и круговорот питательных веществ в агроценозах. В-четвёртых, микоризные препараты становятся всё более востребованными в органическом земледелии и питомниководстве (Lambers & Oliveira, 2019; Сокирко, 2019).

В этой лекции мы подробно разберём Glomeromycota как отдельную филу грибов, арбускулярную микоризу и другие типы микориз, их функции и практическое применение в сельском хозяйстве.

5.1. Glomeromycota: общая характеристика

Glomeromycota — это фила грибов, выделенная в 2001 году на основе молекулярно-филогенетических данных. Ранее её представители включались в состав Zygomycota (порядок Glomales), но молекулярные исследования показали, что это самостоятельная эволюционная линия, которая разошлась с другими грибами очень давно — вероятно, более 400 млн лет назад (Webster & Weber, 2007; Lambers & Oliveira, 2019).

Ключевые признаки Glomeromycota:

  • Облигатный симбиоз с корнями растений — не способны расти без хозяина;
  • Асептированный (ценоцитный) мицелий — гифы без поперечных перегородок;
  • Арбускулярная микориза (AM) — характерный тип симбиоза;
  • Крупные многоядерные споры (гломероспоры, хламидоспоры) — образуются в почве или в корнях;
  • Отсутствие полового размножения — размножаются только бесполым путём (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Таксономия. Согласно современным представлениям, Glomeromycota включает один класс — Glomeromycetes — и четыре порядка: Glomerales, Diversisporales, Paraglomerales и Archaeosporales. Важнейшие роды: Glomus, Rhizophagus (син. Glomus intraradices), Funneliformis, Gigaspora, Scutellospora, Acaulospora, Entrophospora (Webster & Weber, 2007; Lambers & Oliveira, 2019).

Распространение. Glomeromycota встречаются повсеместно — от тропических лесов до арктических тундр, от пахотных земель до естественных лугов. Они обнаружены в 72% всех сосудистых растений и 92% семейств (Lambers & Oliveira, 2019; Wang & Qiu, 2006). Арбускулярная микориза — самый распространённый тип микоризы на Земле.

Эволюционное значение. Ископаемые остатки, похожие на Glomeromycota, найдены в девонских отложениях (около 400 млн лет назад) вместе с остатками первых наземных растений. Считается, что микориза сыграла ключевую роль в выходе растений на сушу — она помогала первым наземным растениям добывать воду и минеральные вещества из бедных почв (Raven et al., 2013; Lambers & Oliveira, 2019).

5.2. Арбускулярная микориза (AM): строение и развитие

Арбускулярная микориза (AM) — наиболее распространённый тип микоризы, характерный для Glomeromycota. Название происходит от арбускул (от лат. arbusculum — маленькое дерево) — древовидных ветвлений гиф внутри клеток корня (Lambers & Oliveira, 2019; Webster & Weber, 2007).

Структура AM

Арбускулярная микориза включает три основных компонента:

1. Внешний мицелий. Гифы гриба распространяются в почве, увеличивая поглощающую поверхность корня. Внешний мицелий может простираться на 10 см и более от корня, значительно превосходя зону истощения, создаваемую самим корнем (Lambers & Oliveira, 2019).

2. Внутренний мицелий. Гифы проникают в кору корня, растут межклеточно (по межклетникам) и внутриклеточно (в клетки коры). Они не проникают в эндодерму, стелу и меристемы (Lambers & Oliveira, 2019).

3. Арбускулы. В клетках коры гифы образуют арбускулы — сильно разветвлённые структуры, которые не прорывают плазмалемму клетки-хозяина, а вдавливают её внутрь, образуя периарбускулярную мембрану. Арбускулы увеличивают площадь контакта между грибом и растением в 10–20 раз, обеспечивая обмен питательными веществами (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

4. Везикулы. У некоторых родов (Glomus, Funneliformis) в клетках или межклетниках образуются везикулы — овальные структуры, содержащие липиды. Они служат запасными питательными веществами для гриба (Lambers & Oliveira, 2019; Webster & Weber, 2007).

Инфекционный процесс

Распознавание и сигналинг. Первый этап установления AM — химическое распознавание между грибом и растением. Корни растения выделяют стриголактоны — сигнальные молекулы (сесквитерпеновые лактоны), которые стимулируют ветвление гиф гриба и их направленный рост к корню. В ответ гриб выделяет липохитоолигосахариды (LCO) — сигнальные молекулы, родственные Nod-факторам ризобий, которые запускают симбиотический сигнальный путь в растении (Lambers & Oliveira, 2019; Akiyama et al., 2005).

Проникновение. Гифа гриба контактирует с эпидермальными клетками корня и образует аппрессорий — уплощённое расширение, прикрепляющееся к поверхности. Затем гифа проникает через клеточную стенку (с помощью гидролитических ферментов) и входит в эпидермальную клетку, где формируется инфекционный клубок (Lambers & Oliveira, 2019).

Колонизация коры. Из эпидермальной клетки гифа распространяется в кору корня, растёт межклеточно и внутриклеточно, образуя арбускулы в клетках коры. Арбускулы живут 1–2 недели, затем дегенерируют, и гриб формирует новые арбускулы в соседних клетках (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Образование спор. В почве или в корне гриб образует крупные многоядерные споры (гломероспоры, хламидоспоры), которые служат для распространения и переживания неблагоприятных условий. Споры могут сохраняться в почве годами (Webster & Weber, 2007; Lambers & Oliveira, 2019).

Функции арбускулярной микоризы

1. Улучшение фосфорного питания. Это главная функция AM. Гифы гриба добывают фосфор из почвенных пор, недоступных корню, и транспортируют его в растение. Фосфор переносится в виде полифосфата и передаётся растению через арбускулы. Растение, в свою очередь, снабжает гриб углеводами (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

2. Улучшение азотного питания. AM-грибы способны поглощать аммоний (NH4+) и транспортировать его в растение в виде аргинина. Они также улучшают доступ к органическому азоту, хотя и в меньшей степени, чем эктомикоризные грибы (Lambers & Oliveira, 2019).

3. Улучшение водного режима. Гифы AM-грибов увеличивают поглощение воды растением, особенно в засушливых условиях. Это связано как с увеличением поглощающей поверхности, так и с улучшением структуры почвы (Lambers & Oliveira, 2019).

4. Защита от патогенов. AM-грибы конкурируют с патогенами за место колонизации и питательные вещества, индуцируют защитные реакции растения (системную устойчивость), выделяют антибиотики. Они защищают растения от Phytophthora, Pythium, Fusarium, нематод (Lambers & Oliveira, 2019; Jacott et al., 2017).

5. Улучшение структуры почвы. Гифы AM-грибов связывают почвенные частицы в агрегаты, улучшая водопроницаемость, аэрацию, противоэрозионную устойчивость почвы (Lambers & Oliveira, 2019).

6. Повышение устойчивости к стрессам. AM-грибы повышают солеустойчивость, тяжелометаллоустойчивость, устойчивость к органическим загрязнителям (Lambers & Oliveira, 2019).

5.3. Эктомикориза (ECM): строение и функции

Эктомикориза (ECM) — второй по распространённости тип микоризы, характерный для древесных пород умеренных и бореальных лесов. Эктомикоризу образуют Basidiomycota (большинство) и Ascomycota (меньшинство) (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Структура эктомикоризы

1. Манжет (чехол). Гриб образует плотный чехол из гиф вокруг корневых окончаний. Манжет может быть толщиной от 1–2 до 30–40 гиф. Он заменяет корневые волоски, которые у эктомикоризных корней отсутствуют (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

2. Сеть Гартига. Гифы проникают между клетками эпидермиса и коры, образуя сеть Гартига (Hartig net) — межклеточную сеть, которая не проникает внутрь клеток. Сеть Гартига — основной сайт обмена питательными веществами между грибом и растением (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

3. Внешний мицелий. Гифы распространяются в почву на несколько метров, образуя мицелиальные тяжи (rhizomorphs) — проводящие структуры, по которым транспортируются вода и питательные вещества (Lambers & Oliveira, 2019).

Функции эктомикоризы

1. Доступ к органическому азоту и фосфору. Эктомикоризные грибы выделяют протеазы, фосфатазы, карбоксилаты, которые разрушают органические соединения почвы и высвобождают азот и фосфор, недоступные растению. Это ключевое преимущество ECM перед AM (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

2. Улучшение минерального питания. ECM-грибы мобилизуют фосфор, калий, кальций, магний из минеральных субстратов с помощью органических кислот (Lambers & Oliveira, 2019).

3. Защита от патогенов. Манжет — физический барьер, гриб выделяет антибиотики, индуцирует системную устойчивость (Lambers & Oliveira, 2019).

4. Устойчивость к стрессам. ECM повышает засухоустойчивость, холодоустойчивость, устойчивость к тяжелым металлам (Lambers & Oliveira, 2019).

Важнейшие эктомикоризные грибы

Basidiomycota:

  • Boletus (белый гриб, боровик);
  • Leccinum (подберёзовик, подосиновик);
  • Suillus (маслёнок);
  • Cantharellus (лисичка);
  • Lactarius (груздь, рыжик);
  • Russula (сыроежка);
  • Amanita (мухомор, бледная поганка);
  • Tricholoma (рядовка, зелёнка);
  • Cortinarius (паутинник);
  • Pisolithus tinctorius (используется в лесовосстановлении) (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Ascomycota:

  • Tuber (трюфели);
  • Elaphomyces (ложные трюфели);
  • Cenococcum geophilum (Webster & Weber, 2007).

5.4. Другие типы микориз

Эрикоидная микориза

Эрикоидная микориза характерна для растений семейства Ericaceae (вересковые) — вереск, черника, брусника, голубика, рододендрон. Грибы — Ascomycota (например, Hymenoscyphus ericae). Гифы проникают внутрь клеток коры, образуя клубки. Эрикоидная микориза специализируется на органическом азоте и фосфоре, позволяя растениям расти на бедных кислых почвах (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Орхидная микориза

Орхидная микориза характерна для Orchidaceae. Грибы — Basidiomycota (например, Rhizoctonia). Гифы проникают внутрь клеток коры, образуя пелотоны — клубки гиф, которые перевариваются растением. Орхидеи зависят от гриба на ранних стадиях развития (семена орхидей не имеют эндосперма и не прорастают без гриба). Многие орхидеи микогетеротрофны — получают углерод от гриба (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Эндофитные грибы

Эндофитные грибы (endophytes) — это грибы, которые живут внутри тканей растений без видимых симптомов. Они не образуют типичных микоризных структур, но приносят пользу растению: защищают от насекомых, патогенов, повышают устойчивость к стрессам. Эндофиты — Ascomycota (например, Neotyphodium, Epichloë) (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

5.5. Микоризные сети и перенос питательных веществ

Важное открытие последних десятилетий — общие микоризные сети (common mycelial networks, CMNs). Гифы одного микоризного гриба могут связывать корни разных растений, образуя подземную сеть для переноса воды, питательных веществ и сигнальных молекул (Lambers & Oliveira, 2019; van der Heijden et al., 2015).

Экспериментальные доказательства. В эксперименте с Linum usitatissimum (лён) и Sorghum bicolor (сорго), связанными общей микоризной сетью (Glomus intraradices), было показано, что лён получает до 94% азота и фосфора через сеть, инвестируя мало углерода, тогда как сорго инвестирует много углерода, но получает мало взамен (Walder et al., 2012). Это демонстрирует асимметрию в торговых отношениях между растениями и грибом.

Практическое значение. CMNs способствуют:

  • Переносу питательных веществ от бобовых (азотфиксирующих) к злакам;
  • Сигналингу о патогенах между растениями;
  • Выживанию молодых растений в сообществе (Lambers & Oliveira, 2019).

5.6. Роль микоризы в питании растений и устойчивости к стрессам

1. Фосфорное питание. Микориза увеличивает поглощение фосфора в 2–10 раз. Гифы добывают фосфор из почвенных пор, недоступных корню, и транспортируют его в растение (Lambers & Oliveira, 2019).

2. Азотное питание. ECM и эрикоидная микориза дают доступ к органическому азоту, AM — к аммонию. Микоризные грибы транспортируют азот в растение в виде аминокислот (аргинин, глутамин) (Lambers & Oliveira, 2019).

3. Водный режим. Микориза улучшает водный режим растений, особенно в засушливых условиях. Гифы увеличивают поглощающую поверхность и улучшают структуру почвы (Lambers & Oliveira, 2019).

4. Устойчивость к патогенам. Микориза защищает растения от почвенных патогенов (Phytophthora, Pythium, Fusarium, нематоды) через конкуренцию, антибиотики, индукцию системной устойчивости (Lambers & Oliveira, 2019; Jacott et al., 2017).

5. Устойчивость к абиотическим стрессам. Микориза повышает солеустойчивость, тяжелометаллоустойчивость, устойчивость к органическим загрязнителям (Lambers & Oliveira, 2019).

5.7. Практическое использование микоризных препаратов

1. Микоризные инокулянты. Препараты на основе Glomus intraradices (син. Rhizophagus irregularis), Gigaspora margarita, Funneliformis mosseae применяются для инокуляции сельскохозяйственных культур, овощей, плодовых, декоративных растений (Lambers & Oliveira, 2019).

2. Лесные питомники. Инокуляция эктомикоризными грибами (Boletus edulis, Suillus luteus, Pisolithus tinctorius) улучшает приживаемость и рост сеянцев сосны, ели, дуба (Raven et al., 2013).

3. Органическое земледелие. Микоризные препараты снижают потребность в фосфорных удобрениях, повышают урожайность, улучшают качество продукции (Lambers & Oliveira, 2019).

4. Рекультивация. Микоризные грибы используются для восстановления нарушенных земель, загрязнённых почв, отвалов горнодобывающей промышленности (Lambers & Oliveira, 2019).

5. Ограничения. Эффективность микоризных препаратов зависит от:

  • Типа почвы (pH, содержание фосфора, органического вещества);
  • Культуры (не все растения отзывчивы на микоризу);
  • Конкуренции с аборигенными грибами;
  • Условий применения (влажность, температура) (Lambers & Oliveira, 2019).

5.8. Заключение

Glomeromycota — отдельная фила грибов, все представители которой образуют арбускулярную микоризу (AM) с большинством сельскохозяйственных культур. Они облигатно симбиотичны, имеют асептированный мицелий, крупные споры, не размножаются половым путём.

Арбускулярная микориза — самый распространённый тип микоризы (72% сосудистых растений). Она улучшает фосфорное и азотное питание, водный режим, защищает от патогенов, повышает устойчивость к стрессам, улучшает структуру почвы.

Эктомикориза — второй по распространённости тип, характерный для древесных пород. Она даёт доступ к органическому азоту и фосфору, защищает от патогенов, повышает устойчивость к стрессам.

Другие типы микориз — эрикоидная, орхидная — специализированы на определённых группах растений.

Микоризные сети (CMNs) связывают растения под землёй, обеспечивая перенос питательных веществ и сигналинг.

Практическое использование микоризных препаратов растёт в органическом земледелии, лесных питомниках, рекультивации. Однако эффективность зависит от условий применения.

Для агронома знание микоризы необходимо для понимания питания растений, снижения доз удобрений, повышения устойчивости культур и устойчивого земледелия.

Garshinka

6. Mucoromycota и другие группы

В предыдущих главах мы рассмотрели три крупнейшие филы царства Fungi — Ascomycota, Basidiomycota и Glomeromycota. Однако грибное разнообразие не исчерпывается этими группами. Существует ещё целый ряд фил, представители которых играют важную роль в агросфере: одни вызывают болезни растений и порчу продукции, другие используются для биоконтроля насекомых-вредителей, третьи паразитируют на пчёлах и других полезных животных.

В этой главе мы рассмотрим четыре группы:

1. Mucoromycota — мукоровые грибы (Mucor, Rhizopus), вызывающие мягкие гнили и порчу продуктов;

2. Entomophthoromycota (ранее в составе Zygomycota) — энтомофторовые грибы (Entomophthora), используемые для биоконтроля насекомых;

3. Chytridiomycota — хитридиомицеты (Synchytrium endobioticum), вызывающие рак картофеля;

4. Microsporidia — микроспоридии (Nosema), паразитирующие на пчёлах и других животных.

Эти группы филогенетически далеки друг от друга, но объединены в одной лекции по практическому принципу — их значением для агросферы и сельскохозяйственного производства. Мы увидим, что даже малоизученные и филогенетически обособленные группы грибов могут иметь огромное экономическое значение.

6.1. Mucoromycota: общая характеристика

Mucoromycota — фила грибов, выделенная в 2016 году на основе молекулярно-филогенетических данных. Ранее её представители включались в состав Zygomycota — сборной группы, которая оказалась полифилетической (Webster & Weber, 2007; Spatafora et al., 2016).

Ключевые признаки Mucoromycota:

  • Асептированный (ценоцитный) мицелий — гифы без поперечных перегородок (септы образуются только для отделения репродуктивных структур);
  • Клеточная стенка содержит хитин и хитозан (частично деацетилированный хитин);
  • Бесполое размножение — спорангиоспорами (неподвижными спорами, образующимися в спорангиях);
  • Половое размножение — зигоспорами, образующимися при слиянии гаметангиев (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996);
  • Сапротрофы или слабые паразиты растений, животных, грибов.

Таксономия. Mucoromycota включает три порядка: Mucorales, Umbelopsidales и Mortierellales. Важнейшие роды: Mucor, Rhizopus, Absidia, Choanephora, Mortierella (Webster & Weber, 2007; Spatafora et al., 2016).

Распространение. Мукоромицеты повсеместно распространены в почве, на растительных остатках, пищевых продуктах, фекалиях животных. Они — одни из самых быстрорастущих грибов, способных колонизировать субстрат в течение нескольких дней (Webster & Weber, 2007).

Экологическая роль. Мукоромицеты — активные сапротрофы, разлагающие простые сахара, крахмал, пектин, но не способные эффективно разрушать целлюлозу и лигнин. Они первыми заселяют богатые углеводами субстраты (фрукты, овощи, хлеб), но затем уступают место другим грибам (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

6.2. Mucorales: Mucor и Rhizopus

Mucorales — крупнейший порядок Mucoromycota, включающий более 300 видов. Важнейшие роды — Mucor и Rhizopus — сапротрофы, вызывающие порчу продуктов и мягкие гнили (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Морфология Mucor и Rhizopus

Мицелий. Асептированный, ценоцитный, быстро растущий. У Rhizopus образуются столоны (гифы, дугообразно изгибающиеся над субстратом) и ризоиды (корнеподобные выросты, прикрепляющие гриб к субстрату). У Mucor столоны и ризоиды отсутствуют (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Спорангиеносцы. Вертикальные гифы, несущие спорангии на вершине. У Rhizopus спорангиеносцы одиночные или группами, у Mucor — разветвлённые (Webster & Weber, 2007).

Спорангии. Шаровидные, чёрные или тёмно-коричневые (у Rhizopus) или серые (у Mucor). Внутри — колонка (columella), спорангиоспоры (Webster & Weber, 2007).

Спорангиоспоры. Одноклеточные, шаровидные или эллипсоидные, гиалиновые или окрашенные, многочисленные (до 100 000 в одном спорангии) (Webster & Weber, 2007; Alexopoulos et al., 1996).

Зигоспоры. Половые споры, образующиеся при слиянии гаметангиев. Толстостенные, тёмные, бородавчатые. Служат для переживания неблагоприятных условий (Webster & Weber, 2007).

Заболевания, вызываемые Mucorales

Мягкие гнили фруктов и овощей. Rhizopus stolonifer — возбудитель мягкой гнили земляники, малины, ежевики, персиков, абрикосов, винограда, томатов, огурцов, дынь. Гриб проникает через раны и трещины, выделяет пектиназы, целлюлазы, гемицеллюлазы, которые разрушают клеточные стенки, вызывая размягчение и водянистость тканей. На поверхности появляется серо-белый пушистый мицелий с чёрными спорангиями (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Мягкая гниль овощей. Rhizopus также вызывает мягкую гниль моркови, свёклы, картофеля, лука, капусты при хранении и транспортировке. Потери могут достигать 30–50% урожая (Agrios, 2005).

Порча хлеба и других продуктов. Rhizopus stolonifer и Mucor — обычные возбудители плесневения хлеба, кондитерских изделий, джемов, варенья. Они быстро растут при высокой влажности и комнатной температуре (Webster & Weber, 2007).

Мукормикоз. Некоторые Mucorales (Rhizopus arrhizus, Mucor circinelloides, Absidia corymbifera) могут вызывать мукормикоз — опасное заболевание людей с ослабленным иммунитетом (диабет, СПИД, трансплантация органов). Инфекция быстро прогрессирует, поражает лёгкие, мозг, ЖКТ, часто заканчивается летально (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Головнёвые болезни растений. Некоторые Mucorales (Choanephora cucurbitarum) вызывают гниль цветков и плодов тыквенных (огурцы, кабачки, тыква), особенно при высокой влажности (Agrios, 2005).

Контроль Mucorales

1. Профилактика. Избегать ранения плодов и овощей при сборе, транспортировке, хранении. Быстрое охлаждение до 0–5 °C замедляет рост гриба (Agrios, 2005).

2. Хранение. Низкая температура, низкая влажность, хорошая вентиляция. Стерилизация контейнеров формальдегидом, сульфатом меди, сернистым газом (Agrios, 2005).

3. Биоконтроль. Дрожжи (Candida, Pichia) — антагонисты Rhizopus, используются для биоконтроля постурожайных гнилей (Agrios, 2005).

4. Фунгициды. Имазалил, тиабендазол, беномил — эффективны против Mucorales, но резистентность быстро развивается (Agrios, 2005).

6.3. Entomophthoromycota: энтомофторовые грибы

Entomophthoromycota — фила грибов, ранее включавшаяся в состав Zygomycota (порядок Entomophthorales). Молекулярные данные показали, что это самостоятельная эволюционная линия, которая, однако, близка к Mucoromycota (Webster & Weber, 2007; Spatafora et al., 2016).

Ключевые признаки Entomophthoromycota:

  • Мицелий асептированный или септированный (септы образуются при старении);
  • Клеточная стенка содержит хитин и хитозан;
  • Бесполое размножение — конидиями (не спорангиоспорами!), которые активно отбрасываются;
  • Половое размножение — зигоспорами;
  • Облигатные или факультативные паразиты насекомых, клещей, нематод (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Экологическая роль. Entomophthoromycota — специализированные патогены насекомых. Они вызывают эпизоотии (массовые заболевания) среди насекомых, регулируя их численность в природе. Некоторые виды узкоспециализированы (паразитируют на одном виде), другие — полифаги (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Entomophthora muscae

Entomophthora muscae — возбудитель энтомофтороза комнатных мух и других двукрылых. Это один из самых известных энтомопатогенных грибов (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

Симптомы. Заражённые мухи становятся вялыми, перестают питаться, поднимаются на возвышенности (стены, потолки, растения), прикрепляются к субстрату хоботком и погибают. Вокруг погибшей мухи образуется белый ореол из конидий, которые активно отбрасываются грибом (Webster & Weber, 2007).

Механизм заражения. Конидии прилипают к кутикуле мухи, прорастают, проникают в тело, разрушают внутренние органы, вызывают гибель насекомого в течение 5–7 дней (Webster & Weber, 2007).

Биоконтроль. E. muscae используется для биоконтроля мух в животноводческих помещениях, птичниках, на свалках. Препараты на основе E. muscae снижают численность мух на 70–90% (Raven et al., 2013).

Другие энтомопатогенные Entomophthoromycota

Entomophaga maimaiga — патоген непарного шелкопряда (Lymantria dispar). Интродуцирован в Северную Америку из Японии для биоконтроля этого опасного вредителя лесов. Эпизоотии E. maimaiga снижают численность шелкопряда на 80–90% (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Pandora neoaphidis — патоген тлей. Вызывает эпизоотии среди тлей на зерновых, овощных, плодовых культурах. Используется для биоконтроля тлей (Webster & Weber, 2007).

Zoophthora radicans — патоген многих насекомых (тли, совки, листоблошки). Используется для биоконтроля вредителей овощных и плодовых культур (Webster & Weber, 2007).

Strongwellsea castrans — патоген мух. Образует отверстие в брюшке мухи, через которое выходят конидии (Webster & Weber, 2007).

Massospora cicadina — патоген периодических цикад. Уникален тем, что инфекция длится 13–17 лет (жизненный цикл цикады), разрушая гениталии насекомого (Webster & Weber, 2007).

Контроль и использование Entomophthoromycota

1. Биоконтроль. Энтомофторовые грибы используются для биоконтроля насекомых-вредителей в закрытом грунте (теплицы) и открытом поле. Препараты на основе Entomophthora, Pandora, Zoophthora эффективны против тлей, мух, совок, шелкопряда (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

2. Ограничения. Энтомофторовые грибы требуют высокой влажности для споруляции и заражения. Они плохо сохраняются в препаратах (короткий срок хранения). Массовое производство сложно и дорого (Webster & Weber, 2007).

3. Перспективы. Генетическая инженерия и новые формуляции могут повысить эффективность и стабильность биопрепаратов на основе энтомофторовых грибов (Raven et al., 2013).

6.4. Chytridiomycota: хитридиомицеты

Chytridiomycota — базальная фила царства Fungi, включающая около 1000 видов. Это единственная группа настоящих грибов, сохранившая жгутиковые стадии — зооспоры и плазмогаметы (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Ключевые признаки Chytridiomycota:

  • Жгутиковые зооспоры с одним задним гладким жгутиком;
  • Клеточная стенка содержит хитин;
  • Таллом — одноклеточный или ризомицелий (зачаточный мицелий без перегородок);
  • Бесполое размножение — зооспорами в зооспорангиях;
  • Половое размножение — изогамия, гетерогамия, оогамия, соматогамия (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Экологическая роль. Хитридиомицеты — водные и почвенные сапротрофы и паразиты. Они разрушают целлюлозу, хитин, кератин. Некоторые — паразиты водорослей, растений, грибов, насекомых (Webster & Weber, 2007; Сокирко, 2019).

Значение для агросферы. Наиболее важный представитель — Synchytrium endobioticum, возбудитель рака картофеля (Сокирко, 2019; Campos & Ortiz, 2020).

Synchytrium endobioticum: рак картофеля

Synchytrium endobioticum — облигатный внутриклеточный паразит картофеля и некоторых диких видов Solanum. Вызывает рак картофеля — одно из самых опасных карантинных заболеваний (Сокирко, 2019; Campos & Ortiz, 2020).

История. Рак картофеля впервые описан в Венгрии в 1896 году. Распространён в большинстве стран Европы, Азии, Северной и Южной Америки, Океании. Включён в список A2 карантинных организмов EPPO (Campos & Ortiz, 2020).

Симптомы. На клубнях, столонах, глазках образуются бугристые наросты («раковые» опухоли), сначала белые, затем бурые, чёрные. Наросты напоминают цветную капусту. Поражённые клубни не хранятся, загнивают, теряют товарные качества. Надземные части — угнетены, желтеют, увядают (Сокирко, 2019; Campos & Ortiz, 2020).

Жизненный цикл. Покоящиеся споры (зимние цисты) сохраняются в почве более 40 лет. Весной они прорастают, образуя сорус зооспорангиев с зооспорами. Зооспоры инфицируют клетки клубня, образуя плазмодий. Плазмодий превращается в летнюю цисту, которая прорастает в сорус зооспорангиев. Цикл повторяется многократно в течение сезона. При ухудшении условий образуются зимние цисты (Сокирко, 2019).

Влияние на урожай. Потери урожая могут достигать 50–100%. Поля, заражённые раком картофеля, исключаются из севооборота на десятки лет (Campos & Ortiz, 2020).

Контроль.

  • Карантин — запрет на вывоз клубней и почвы из заражённых зон;
  • Устойчивые сорта — основной метод борьбы. Выведены сорта, устойчивые к патотипам 1(D1), 2(G1), 6(O1), 18(T1) (Campos & Ortiz, 2020);
  • Севооборот — исключение картофеля на 10–20 лет;
  • Химическая обработка почвы — фумиганты (метам-натрий, хлорпикрин), дорого и не всегда эффективно (Сокирко, 2019; Campos & Ortiz, 2020);
  • Биоконтроль — внесение хитина (крабовый панцирь) стимулирует хитинолитические микроорганизмы, разрушающие цисты (Webster & Weber, 2007).

Патотипы. Более 40 патотипов S. endobioticum описано в Европе. Наиболее важные — 1(D1), 2(G1), 6(O1), 8(F1), 18(T1). Новые патотипы продолжают появляться (Campos & Ortiz, 2020).

6.5. Microsporidia: микроспоридии

Microsporidia — фила грибов, включающая около 1500 видов. Долгое время считались простейшими, но молекулярные данные показали, что это крайне редуцированные грибы, близкие к хитридиомицетам или зигомицетам (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Ключевые признаки Microsporidia:

  • Одноклеточные паразиты животных;
  • Отсутствие митохондрий (сохранились рудименты — митосомы);
  • Полярная трубка — уникальная структура для инъекции содержимого споры в клетку хозяина;
  • Клеточная стенка содержит хитин;
  • Споры устойчивы к неблагоприятным условиям (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Экологическая роль. Микроспоридии — внутриклеточные паразиты насекомых, рыб, ракообразных, млекопитающих. Они широко распространены в природе и могут вызывать эпизоотии среди насекомых (Raven et al., 2013).

Значение для агросферы. Наибольшее значение имеют Nosema apis и Nosema ceranae — паразиты медоносных пчёл (Raven et al., 2013).

Nosema apis и Nosema ceranae: нозематоз пчёл

Nosema apis — возбудитель нозематоза медоносных пчёл (Apis mellifera). Nosema ceranae — близкий вид, выявленный в 2000-х годах, более вирулентный и распространённый повсеместно (Raven et al., 2013).

Симптомы. Заражённые пчёлы страдают диареей, слабеют, теряют способность летать, погибают вне улья. Семьи ослабевают, медопродуктивность падает, возможна гибель колонии (Raven et al., 2013).

Механизм заражения. Споры Nosema попадают в кишечник пчелы с кормом или водой. Полярная трубка выстреливает содержимое споры в клетку эпителия, где паразит размножается, разрушая клетки (Raven et al., 2013).

Влияние на пчеловодство. Нозематоз наносит значительный ущерб пчеловодству во всём мире. Потери меда достигают 30–50%. В сочетании с другими факторами (клещ Varroa, вирусы, пестициды) нозематоз способствует синдрому разрушения колоний (Colony Collapse Disorder, CCD) (Raven et al., 2013).

Контроль.

  • Замена маток и сот;
  • Дезинфекция ульев (уксусная кислота, формалин);
  • Антибиотики (фумагиллин) — эффективны, но запрещены в ЕС из-за остатков в мёде (Raven et al., 2013);
  • Пробиотики и растительные экстракты — перспективные методы (Raven et al., 2013).

Другие микроспоридии. Nosema bombycis — паразит тутового шелкопряда, вызывает пебрину — опасное заболевание шелководства. Encephalitozoon cuniculi — паразит кроликов и иммунокомпрометированных людей. Enterocytozoon bieneusi — паразит человека, вызывает диарею у ВИЧ-инфицированных (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

6.6. Практическое значение рассмотренных групп для агронома

1. Mucoromycota — порча продукции. Rhizopus и Mucor вызывают мягкие гнили фруктов, овощей, корнеплодов при хранении и транспортировке. Потери достигают 30–50% (Agrios, 2005). Профилактика — быстрое охлаждение, низкая влажность, избегание ранений.

2. Entomophthoromycota — биоконтроль. Entomophthora, Pandora, Zoophthora используются для биоконтроля насекомых-вредителей (тли, мухи, совки, шелкопряд). Препараты эффективны, но требуют высокой влажности и сложны в производстве (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

3. Chytridiomycota — рак картофеля. Synchytrium endobioticum — опасный карантинный патоген картофеля. Потери урожая до 100%. Контроль — карантин, устойчивые сорта, севооборот (Campos & Ortiz, 2020; Сокирко, 2019).

4. Microsporidia — нозематоз пчёл. Nosema apis и N. ceranae наносят значительный ущерб пчеловодству, снижая медопродуктивность и способствуя гибели колоний. Учитывая роль пчёл как опылителей, нозематоз представляет угрозу для растениеводства (Raven et al., 2013).

5. Биотехнологический потенциал. Некоторые Mucorales (Rhizopus, Mucor) используются для производства органических кислот (фумаровая, молочная, лимонная), ферментов (амилазы, протеазы), стероидов. Entomophthoromycota — перспективные агенты биоконтроля (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

6.7. Заключение

В этой лекции мы рассмотрели четыре группы грибов, филогенетически далёких друг от друга, но объединённых практическим значением для агросферы:

Mucoromycota — мукоровые грибы (Mucor, Rhizopus), вызывающие мягкие гнили фруктов, овощей, корнеплодов при хранении и транспортировке. Потери достигают 30–50%. Профилактика — быстрое охлаждение, низкая влажность, избегание ранений.

Entomophthoromycota — энтомофторовые грибы (Entomophthora, Pandora, Zoophthora), используемые для биоконтроля насекомых-вредителей. Препараты эффективны, но требуют высокой влажности и сложны в производстве.

Chytridiomycota — хитридиомицеты (Synchytrium endobioticum), вызывающие рак картофеля — опасное карантинное заболевание. Потери урожая до 100%. Контроль — карантин, устойчивые сорта, севооборот.

Microsporidia — микроспоридии (Nosema apis, N. ceranae), паразитирующие на медоносных пчёлах и вызывающие нозематоз. Наносят значительный ущерб пчеловодству и представляют угрозу для растениеводства из-за роли пчёл как опылителей.

Для агронома знание этих групп необходимо для диагностики болезней, защиты урожая, биоконтроля вредителей и сохранения популяций полезных насекомых.

7. Практическое значение грибов для аграриев

За предыдущие шесть глав мы познакомились с современной филогенией и классификацией грибов, детально разобрали важнейшие группы — Ascomycota, Basidiomycota, Glomeromycota, Mucoromycota, Entomophthoromycota, Chytridiomycota и Microsporidia. Теперь настало время систематизировать полученные знания и ответить на главный вопрос: какое практическое значение имеют грибы для агронома?

Грибы — это уникальная группа организмов, которая одновременно может быть врагом и другом сельского хозяйства. Одни грибы уничтожают урожай, другие — повышают продуктивность растений. Одни портят продукты, другие — создают их. Одни отравляют корма микотоксинами, другие — производят лекарства и ферменты. Именно эта двойственность делает знание микологии абсолютно необходимым для современного агронома (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

В этой главе мы рассмотрим пять ключевых аспектов практического значения грибов для аграриев:

1. Фитопатогены — потери урожая и микотоксины;

2. Микоризные симбионты — повышение продуктивности растений;

3. Биоконтроль — антагонисты и энтомопатогены;

4. Биодеградация — разложение растительных остатков и биоремедиация;

5. Пищевая и фармацевтическая промышленность.

Каждый из этих аспектов мы разберём подробно, с конкретными примерами и ссылками на источники.

7.1. Фитопатогены: потери урожая и микотоксины

Масштабы потерь от грибных болезней

Грибы и грибоподобные организмы (оомицеты) — главные возбудители болезней сельскохозяйственных культур. По оценкам Продовольственной и сельскохозяйственной организации ООН (FAO), ежегодные мировые потери урожая от болезней растений составляют 20–40% потенциального производства продовольствия. Из них на грибные болезни приходится более 70% (Agrios, 2005).

В денежном выражении потери от грибных болезней достигают сотен миллиардов долларов ежегодно. Например, только фитофтороз картофеля (возбудитель — оомицет Phytophthora infestans) наносит ежегодный ущерб в 6,1 млрд евро (Campos & Ortiz, 2020). Ржавчина сои (Phakopsora pachyrhizi) может уничтожать до 80% урожая в благоприятные для патогена годы (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007). Пирикуляриоз риса (Magnaporthe oryzae) ежегодно уничтожает 10–30% урожая риса, а в отдельные годы — до 50–90% (Agrios, 2005).

Исторические примеры катастрофических эпифитотий:

  • Ирландский голод 1845–1849 гг. — фитофтороз картофеля уничтожил урожай, что привело к гибели около 1 млн человек и эмиграции ещё 1 млн (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020);
  • Бенгальский голод 1943 г. — бурая пятнистость риса (Cochliobolus miyabeanus) уничтожила 50–90% урожая, что привело к гибели 2 млн человек (Agrios, 2005);
  • Эпифитотия южного гельминтоспориоза кукурузы 1970 г. в США — потери 15% урожая кукурузы, ущерб 1 млрд долларов (Agrios, 2005).

Важнейшие фитопатогенные грибы и вызываемые ими болезни

Ascomycota:

  • Fusarium — фузариозные увядания, корневые гнили, фузариоз колоса. Поражает томаты, бананы, пшеницу, ячмень, кукурузу. Потери 10–50% (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020);
  • Venturia inaequalis — парша яблони. Потери 50–70% товарного урожая (Agrios, 2005);
  • Claviceps purpurea — спорынья злаков. Содержит эргоалкалоиды, опасные для человека и животных (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007);
  • Sclerotinia sclerotiorum — белая гниль (склеротиниоз) подсолнечника, сои, рапса, моркови. Потери 10–50% (Agrios, 2005);
  • Botrytis cinerea — серая гниль винограда, земляники, томатов, огурцов. Потери 20–50% (Agrios, 2005);
  • Alternaria solani — ранняя гниль (альтернариоз) картофеля и томата. Потери 10–40% (Campos & Ortiz, 2020);
  • Colletotrichum — антракнозы фасоли, тыквенных, перца, томата, кофе, манго. Потери 10–50% (Agrios, 2005);
  • Magnaporthe oryzae — пирикуляриоз риса. Потери 10–90% (Agrios, 2005).

Basidiomycota:

  • Puccinia graminis — стеблевая ржавчина пшеницы. Потери 10–50% (Agrios, 2005);
  • Phakopsora pachyrhizi — ржавчина сои. Потери 10–80% (Agrios, 2005);
  • Ustilago maydis — головня кукурузы. Потери 10–100% (Agrios, 2005);
  • Tilletia caries — твёрдая головня пшеницы. Потери 10–50% (Agrios, 2005);
  • Rhizoctonia solani — ризоктониоз (чёрная парша) картофеля, сахарной свёклы, моркови. Потери 10–30% (Campos & Ortiz, 2020; Agrios, 2005);
  • Armillaria — корневые гнили плодовых и лесных деревьев. Потери 10–100% (Agrios, 2005).

Chytridiomycota:

  • Synchytrium endobioticum — рак картофеля. Потери 50–100%. Карантинный объект (Campos & Ortiz, 2020; Сокирко, 2019).

Оомицеты (Chromista):

  • Phytophthora infestans — фитофтороз картофеля и томата. Потери 30–100% (Campos & Ortiz, 2020);
  • Pythium — корневые гнили, чёрная ножка, выпревание. Потери 10–50% (Agrios, 2005);
  • Plasmopara viticola — милдью винограда. Потери 50–100% (Agrios, 2005);
  • Peronospora tabacina — ложная мучнистая роса табака. Потери 50–100% (Agrios, 2005).

Микотоксины: скрытая угроза

Помимо прямых потерь урожая, фитопатогенные грибы продуцируют микотоксины — ядовитые вторичные метаболиты, опасные для человека и животных. Микотоксины не разрушаются при термической обработке, накапливаются в продуктах и кормах, вызывая острые и хронические отравления (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

Важнейшие микотоксины:

1. Афлатоксины (Aspergillus flavus, A. parasiticus). Поражают арахис, кукурузу, пшеницу, рис, специи. Канцерогены (рак печени). Допустимая концентрация — 20 ppb (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

2. Фумонизины (Fusarium verticillioides, F. proliferatum). Поражают кукурузу. Вызывают нейротоксикоз у лошадей (лейкоэнцефаломаляция), отёк лёгких у свиней, рак пищевода у человека (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

3. Дезоксиниваленол (DON, вомитоксин) (Fusarium graminearum). Поражает пшеницу, ячмень, кукурузу. Вызывает отказ от корма, рвоту, иммуносупрессию у животных. В России и ЕС нормируется в продовольственном зерне (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

4. Зеараленон (Fusarium graminearum). Поражает кукурузу, пшеницу. Вызывает эстрогенный синдром у свиней (аборты, бесплодие, феминизация самцов) (Agrios, 2005).

5. Эргоалкалоиды (Claviceps purpurea). Поражают рожь, пшеницу, ячмень. Вызывают эрготизм — гангрену конечностей, судороги, галлюцинации, аборты (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

6. Охратоксины (Aspergillus ochraceus, Penicillium viridicatum). Поражают зерновые, кофе, виноград. Вызывают нефропатию (поражение почек), канцерогены (Agrios, 2005).

7. Патулин (Penicillium expansum). Поражает яблоки, груши, соки. Вызывает отёк лёгких, кровоизлияния, паралич (Agrios, 2005).

Меры профилактики микотоксинов:

  • Соблюдение севооборота и агротехники;
  • Уборка урожая в оптимальные сроки;
  • Сушка зерна до влажности 12–14%;
  • Хранение при низкой температуре и влажности;
  • Контроль содержания микотоксинов в продукции (Agrios, 2005).

7.2. Микоризные симбионты: повышение продуктивности растений

Роль микоризы в питании растений

Микориза — симбиотическая ассоциация между грибом и корнем растения. Около 85–90% всех сосудистых растений образуют микоризу (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013). Микоризные грибы улучшают питание растений, особенно фосфорное, азотное, водное, и повышают устойчивость к стрессам.

Арбускулярная микориза (AM). Образуется Glomeromycota (Glomus, Rhizophagus, Funneliformis). Встречается у 72% сосудистых растений, включая большинство сельскохозяйственных культур — пшеницу, кукурузу, рис, сою, томаты, картофель (Lambers & Oliveira, 2019). AM увеличивает поглощение фосфора в 2–10 раз, азота — в 1,5–2 раза, улучшает водный режим, защищает от патогенов (Lambers & Oliveira, 2019).

Эктомикориза (ECM). Образуется Basidiomycota (Boletus, Suillus, Lactarius, Cantharellus) и Ascomycota (Tuber). Встречается у древесных пород — дуба, бука, сосны, ели, берёзы. ECM даёт доступ к органическому азоту и фосфору, повышает устойчивость к засухе, патогенам (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Эрикоидная микориза. Образуется Ascomycota (Hymenoscyphus ericae) с Ericaceae (вереск, черника, брусника, голубика). Специализируется на органическом азоте, позволяет расти на бедных кислых почвах (Lambers & Oliveira, 2019).

Орхидная микориза. Образуется Basidiomycota (Rhizoctonia) с Orchidaceae. Необходима для прорастания семян орхидей (Lambers & Oliveira, 2019).

Практическое использование микоризных препаратов

1. Микоризные инокулянты. Препараты на основе Glomus intraradices (син. Rhizophagus irregularis), Gigaspora margarita, Funneliformis mosseae применяются для инокуляции овощных, плодовых, декоративных культур. Эффект: повышение урожайности на 10–30%, снижение доз фосфорных удобрений на 20–50% (Lambers & Oliveira, 2019).

2. Лесные питомники. Инокуляция эктомикоризными грибами (Boletus edulis, Suillus luteus, Pisolithus tinctorius) улучшает приживаемость и рост сеянцев сосны, ели, дуба на 20–50% (Raven et al., 2013; Lambers & Oliveira, 2019).

3. Органическое земледелие. Микоризные препараты снижают потребность в минеральных удобрениях, повышают качество продукции, улучшают структуру почвы (Lambers & Oliveira, 2019).

4. Рекультивация. Микоризные грибы используются для восстановления нарушенных земель, загрязнённых почв, отвалов горнодобывающей промышленности (Lambers & Oliveira, 2019).

5. Ограничения. Эффективность микоризных препаратов зависит от:

  • Типа почвы (pH, содержание фосфора, органического вещества);
  • Культуры (не все растения отзывчивы на микоризу);
  • Конкуренции с аборигенными грибами;
  • Условий применения (влажность, температура) (Lambers & Oliveira, 2019).

7.3. Биоконтроль: антагонисты и энтомопатогены

Грибы-антагонисты фитопатогенов

Trichoderma — Ascomycota, почвенный гриб, антагонист многих фитопатогенов (Rhizoctonia, Pythium, Fusarium, Sclerotinia). Механизмы действия:

  • Микопаразитизм — разрушение гиф патогена;
  • Конкуренция за питательные вещества и место;
  • Антибиотики (триходермин, глиотоксин);
  • Индукция системной устойчивости растения (Webster & Weber, 2007; Agrios, 2005).

Применение. Триходермин — биофунгицид для обработки семян, почвы, растений. Эффективен против корневых гнилей, увяданий, склеротиниоза (Agrios, 2005).

Gliocladium — Ascomycota, антагонист Rhizoctonia, Pythium, Sclerotinia. Применяется для биоконтроля корневых гнилей (Webster & Weber, 2007).

Coniothyrium minitans — Ascomycota, паразит склероциев Sclerotinia sclerotiorum. Разрушает склероции в почве, снижая инфекционный фон (Agrios, 2005).

Bacillus subtilis, Pseudomonas fluorescens — бактерии-антагонисты, используются совместно с грибами для биоконтроля (Agrios, 2005).

Энтомопатогенные грибы

Beauveria bassiana — Ascomycota, патоген более 700 видов насекомых (колорадский жук, тля, белокрылка, трипсы). Конидии прилипают к кутикуле, прорастают, проникают в тело, вызывают микоз и гибель. Препараты: BotaniGard, Mycotrol (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Metarhizium anisopliae — Ascomycota, патоген саранчи, кузнечиков, термитов, клещей. Препараты: Green Muscle (против саранчи), BioBlast (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Entomophthora muscae — Entomophthoromycota, патоген комнатных мух. Вызывает эпизоотии, снижая численность мух на 70–90% (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Pandora neoaphidis — Entomophthoromycota, патоген тлей. Используется для биоконтроля тлей на зерновых, овощных, плодовых культурах (Webster & Weber, 2007).

Entomophaga maimaiga — Entomophthoromycota, патоген непарного шелкопряда. Интродуцирован в США из Японии. Снижает численность шелкопряда на 80–90% (Raven et al., 2013).

Преимущества и ограничения биоконтроля

Преимущества:

  • Безопасность для людей, животных, окружающей среды;
  • Специфичность (не уничтожают полезных насекомых);
  • Отсутствие резистентности у вредителей;
  • Возможность применения в органическом земледелии (Raven et al., 2013).

Ограничения:

  • Медленное действие (по сравнению с химическими пестицидами);
  • Зависимость от условий среды (влажность, температура);
  • Сложность производства и хранения;
  • Высокая стоимость (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

7.4. Биодеградация: разложение растительных остатков и биоремедиация

Роль грибов в разложении растительных остатков

Грибы — главные редуценты растительных остатков в природе. Вместе с гетеротрофными бактериями они разлагают целлюлозу, гемицеллюлозу, лигнин, пектин, белки, возвращая углерод, азот, фосфор и другие элементы в почву (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Basidiomycota — главные разрушители древесины. Белые гнили (Trametes versicolor, Pleurotus ostreatus) разрушают лигнин и целлюлозу. Бурые гнили (Serpula lacrymans, Laetiporus sulphureus) разрушают целлюлозу, оставляя лигнин (Webster & Weber, 2007).

Ascomycota — разрушители целлюлозы (Trichoderma, Chaetomium), кератина (Arthroderma), хитина (Beauveria, Metarhizium) (Webster & Weber, 2007).

Экологическое значение. Грибы-редуценты поддерживают круговорот веществ в экосистемах, формируют гумус, улучшают структуру почвы, повышают плодородие (Raven et al., 2013).

Биоремедиация: очистка загрязнённых почв

Биоремедиация — использование живых организмов для очистки загрязнённых сред. Грибы обладают мощными ферментативными системами (лакказы, пероксидазы, целлюлазы), способными разрушать ксенобиотики, пестициды, нефтепродукты, полихлорированные бифенилы (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Белые гнили (Trametes versicolor, Pleurotus ostreatus, Phanerochaete chrysosporium) — наиболее эффективные биоремедиаторы. Phanerochaete chrysosporium разрушает лигнин и многие органические загрязнители (Raven et al., 2013).

Применение:

  • Очистка почв от нефтепродуктов;
  • Разрушение пестицидов (ДДТ, атразин);
  • Обезвреживание полихлорированных бифенилов (ПХБ);
  • Очистка сточных вод (Raven et al., 2013).

Trichoderma — Ascomycota, разрушает целлюлозу, используется для компостирования растительных остатков и биоремедиации (Webster & Weber, 2007).

7.5. Пищевая и фармацевтическая промышленность

Пищевая промышленность

1. Хлебопечение. Saccharomyces cerevisiae (Ascomycota) сбраживает сахара в этанол и CO2. CO2 поднимает тесто, придаёт хлебу пористость и вкус (Raven et al., 2013).

2. Виноделие. Saccharomyces cerevisiae сбраживает виноградный сок в вино. Разные штаммы дрожжей придают вину различные ароматы (Raven et al., 2013).

3. Пивоварение. Saccharomyces cerevisiae (верховое брожение) и S. pastorianus (низовое брожение) используются для производства пива (Raven et al., 2013).

4. Сыроварение. Penicillium roqueforti придаёт Roquefort, Danish blue, Stilton, Gorgonzola характерный вкус и текстуру. Penicillium camemberti — Camembert и Brie (Raven et al., 2013).

5. Соевый соус, мисо. Aspergillus oryzae ферментирует сою и пшеницу, придавая продуктам умами (вкус глутамата) (Raven et al., 2013).

6. Съедобные грибы. Agaricus bisporus (шампиньон), Pleurotus ostreatus (вешенка), Lentinula edodes (шиитаке), Flammulina velutipes (энокитаке), Volvariella volvacea (соломенный гриб). Мировое производство — более 3,7 млн тонн в год (Raven et al., 2013).

7. Микопротеин. Fusarium venenatum используется для производства микопротеина Quorn — белкового продукта для вегетарианцев (Raven et al., 2013).

Фармацевтическая промышленность

1. Антибиотики. Penicillium chrysogenum — продуцент пенициллина, первого антибиотика. Acremonium — продуцент цефалоспоринов. Антибиотики спасли миллионы жизней (Raven et al., 2013).

2. Иммуносупрессанты. Tolypocladium inflatum — продуцент циклоспорина, используемого при трансплантации органов для подавления отторжения (Raven et al., 2013).

3. Статины. Penicillium citrinum — продуцент мевастатина, предшественника статинов — препаратов для снижения холестерина (Raven et al., 2013).

4. Ферменты. Aspergillus niger — продуцент амилазы, протеазы, целлюлазы, лимонной кислоты. Trichoderma reesei — продуцент целлюлазы для биотоплива и текстильной промышленности (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

5. Витамины. Ashbya gossypii — продуцент рибофлавина (витамин B2). Saccharomyces — продуцент витаминов группы B (Raven et al., 2013).

6. Органические кислоты. Aspergillus niger — лимонная кислота. Rhizopus — фумаровая, молочная кислота (Webster & Weber, 2007).

7.6. Заключение

Грибы — уникальная группа организмов, значение которой для агросферы трудно переоценить. Они одновременно являются:

  • Врагами — фитопатогены уничтожают 10–40% мирового урожая, продуцируют опасные микотоксины;
  • Друзьями — микоризные симбионты повышают продуктивность растений на 10–30%, снижают потребность в удобрениях;
  • Защитниками — биоконтроль на основе грибов-антагонистов и энтомопатогенов заменяет химические пестициды;
  • Санитарами — биодеградация растительных остатков и биоремедиация загрязнённых почв;
  • Производителями — пищевая и фармацевтическая промышленность использует грибы для производства хлеба, вина, сыра, антибиотиков, ферментов, витаминов.

Для современного агронома знание микологии — не просто теоретический багаж, а необходимый инструмент для диагностики болезней, защиты урожая, повышения продуктивности растений, устойчивого земледелия и производства качественной продукции.

Максидом

8. Заключение

Мы прошли путь от общего определения грибов как отдельного царства живой природы до детального разбора важнейших фил, их морфологии, жизненных циклов и практического значения для сельского хозяйства. Настало время систематизировать полученные знания, выделить главное и наметить перспективы дальнейшего изучения.

Эта заключительная глава не содержит нового фактического материала. Её задача — помочь выстроить целостную картину мира грибов, увидеть связи между отдельными группами и понять, каким образом фундаментальные знания по систематике и таксономии грибов превращаются в практические инструменты агронома (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

8.1. Что мы узнали: краткий обзор модуля

Давайте вспомним основные вехи нашего курса.

Глава 1 заложила фундамент. Мы установили, что грибы — это самостоятельное царство (Fungi, или Mycota), принципиально отличающееся от растений и животных по типу питания (осмотрофия — всасывание, а не заглатывание), составу клеточной стенки (хитин, а не целлюлоза), запасным веществам (гликоген, а не крахмал) и молекулярно-генетическим характеристикам. Мы выяснили, что грибы ближе к животным, чем к растениям, и вместе с ними образуют супергруппу Opisthokonta (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007). Мы также обозначили многообразие экологических ролей грибов — от редуцентов и симбионтов до патогенов и продуцентов биологически активных соединений.

Глава 2 была посвящена современной классификации. Мы увидели, как молекулярная революция конца XX — начала XXI века радикально перестроила традиционную систему. Отказ от Zygomycota как единой группы и выделение Mucoromycota, Glomeromycota, Entomophthoromycota и других фил стало важнейшим шагом к естественной системе, отражающей эволюционные связи. Мы познакомились с основными филами царства Fungi: Chytridiomycota, Blastocladiomycota, Neocallimastigomycota, Microsporidia, Glomeromycota, Mucoromycota, Ascomycota и Basidiomycota (Spatafora et al., 2016; Webster & Weber, 2007). Мы также обсудили оомицеты — не грибы, а отдельную группу в царстве Chromista, которые, однако, изучаются вместе с грибами из-за экологического и агрономического сходства (Сокирко, 2019).

Глава 3 была посвящена Ascomycota — крупнейшей филе грибов. Мы разобрали их ключевые признаки (аск, аскоспоры, конидии), типы аскокарпов (клейстотеции, перитеции, апотеции) и жизненный цикл. Мы детально рассмотрели важнейших фитопатогенов — Fusarium (фузариозы), Venturia (парша яблони), Claviceps (спорынья), Sclerotinia (склеротиниоз), Botrytis (серая гниль), Alternaria (альтернариозы), Colletotrichum (антракнозы), Magnaporthe (пирикуляриоз риса) — и полезные виды — Saccharomyces (дрожжи), Penicillium (пенициллин, сыры), Aspergillus (ферменты, афлатоксины), сморчки, трюфели, а также энтомопатогены — Beauveria, Metarhizium (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Глава 4 познакомила нас с Basidiomycota — второй по величине филой. Мы изучили их ключевые признаки (базидия, базидиоспоры, долипоровые септы, пряжки), жизненный цикл с доминирующей дикариотической стадией. Мы разобрали опаснейших фитопатогенов — ржавчинные (Puccinia, Phakopsora, Hemileia), головнёвые (Ustilago, Tilletia), Rhizoctonia (ризоктониоз), Armillaria (опёнок) — и незаменимых симбионтов — эктомикоризные грибы (Boletus, Suillus, Lactarius, Cantharellus), редуцентов древесины (Trametes, Fomes, Ganoderma) и пищевые виды (Agaricus, Pleurotus, Lentinula) (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Глава 5 была посвящена Glomeromycota и микоризе. Мы выяснили, что арбускулярная микориза (AM) — самый распространённый тип микоризы (72% сосудистых растений), образуемый Glomeromycota (Glomus, Rhizophagus, Funneliformis). Мы разобрали строение AM (арбускулы, везикулы, внешний и внутренний мицелий), инфекционный процесс и функции — улучшение фосфорного и азотного питания, водного режима, защита от патогенов. Мы также рассмотрели эктомикоризу (ECM), эрикоидную и орхидную микоризу, общие микоризные сети (CMNs) и практическое использование микоризных препаратов (Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Глава 6 завершила обзор филогенетического разнообразия, рассмотрев Mucoromycota (Mucor, Rhizopus — мягкие гнили, порча продуктов), Entomophthoromycota (Entomophthora, Pandora — биоконтроль насекомых), Chytridiomycota (Synchytrium endobioticum — рак картофеля) и Microsporidia (Nosema — нозематоз пчёл). Мы увидели, что даже филогенетически далёкие и малоизученные группы могут иметь огромное экономическое значение (Сокирко, 2019; Webster & Weber, 2007; Campos & Ortiz, 2020).

Глава 7 систематизировала практическое значение грибов для аграриев по пяти ключевым аспектам: фитопатогены (потери урожая, микотоксины), микоризные симбионты (повышение продуктивности), биоконтроль (антагонисты, энтомопатогены), биодеградация (разложение остатков, биоремедиация) и пищевая и фармацевтическая промышленность (Agrios, 2005; Raven et al., 2013).

8.2. Главные выводы: что должен усвоить агроном

Пройденный путь позволяет сформулировать несколько ключевых выводов, которые должны остаться с вами после завершения модуля.

Первый вывод: грибы — это отдельное царство, а не «низшие растения». Понимание филогенетической самостоятельности грибов — не абстрактная теоретическая деталь, а практически важное знание. Именно оно объясняет, почему фунгициды, эффективные против настоящих грибов (Ascomycota, Basidiomycota), не действуют на оомицетов (Phytophthora, Pythium), и наоборот. Хитиновые клеточные стенки настоящих грибов и целлюлозные — оомицетов требуют разных подходов к защите растений (Agrios, 2005; Сокирко, 2019).

Второй вывод: современная систематика основана на молекулярных данных. Традиционная морфологическая классификация устарела. Молекулярно-филогенетические методы позволили выявить истинные родственные связи между группами и отказаться от искусственных таксонов (например, Zygomycota). Знание современной филогении необходимо для точной диагностики возбудителей болезней и прогнозирования их свойств (Spatafora et al., 2016; Webster & Weber, 2007).

Третий вывод: грибы — это не только враги, но и друзья. Фитопатогенные грибы наносят огромный ущерб сельскому хозяйству, уничтожая 10–40% мирового урожая и продуцируя опасные микотоксины. Однако микоризные грибы повышают продуктивность растений на 10–30%, биоконтрольные грибы заменяют химические пестициды, а пищевые и фармацевтические виды обеспечивают человечество хлебом, вином, сыром, антибиотиками и ферментами (Agrios, 2005; Lambers & Oliveira, 2019; Raven et al., 2013).

Четвёртый вывод: грибы — ключевые игроки в экосистемах. Как редуценты, грибы разлагают растительные остатки и возвращают углерод и минеральные элементы в почву. Как симбионты, они обеспечивают растения фосфором, азотом и водой. Как патогены, они регулируют численность популяций растений и насекомых. Без грибов нормальное функционирование агроценозов и естественных экосистем невозможно (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Пятый вывод: знание микологии — необходимое условие устойчивого земледелия. Современное сельское хозяйство сталкивается с вызовами: изменение климата, резистентность патогенов к фунгицидам, необходимость снижения химической нагрузки на окружающую среду. Ответы на эти вызовы невозможны без глубокого понимания биологии и экологии грибов (Agrios, 2005; Lambers & Oliveira, 2019).

8.3. Связь систематики и практики: от таксона к стратегии защиты

Покажем на конкретных примерах, как знание систематики грибов напрямую влияет на практические решения агронома.

Пример 1: Фитофтороз картофеля. Возбудитель — Phytophthora infestans — оомицет, а не настоящий гриб. Его клеточная стенка содержит целлюлозу, а не хитин. Митохондриальные кристи — трубчатые. Это означает, что фунгициды, действующие на синтез хитина или эргостерола (азолы, стробилурины), не будут эффективны. Для борьбы с фитофторозом необходимы специальные препараты — металаксил, манкоцеб, цимоксанил (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

Пример 2: Ржавчина и головня. Возбудители — Basidiomycota (Puccinia, Ustilago, Tilletia). Это настоящие грибы с хитиновыми стенками. Для борьбы с ними эффективны триазолы (тебуконазол, пропиконазол), стробилурины (азоксистробин), карбоксамиды (карбоксин). Знание жизненных циклов (гетероциклические ржавчины требуют уничтожения промежуточных хозяев — барбариса) позволяет разрабатывать интегрированные стратегии защиты (Agrios, 2005; Webster & Weber, 2007).

Пример 3: Микориза и удобрения. Арбускулярная микориза (Glomeromycota) улучшает фосфорное питание растений. Инокуляция микоризными препаратами позволяет снизить дозы фосфорных удобрений на 20–50% без потери урожая. Знание того, что микориза подавляется при высоком содержании фосфора в почве, помогает агроному правильно спланировать систему удобрения (Lambers & Oliveira, 2019).

Пример 4: Биоконтроль. Trichoderma (Ascomycota) — антагонист Rhizoctonia, Pythium, Fusarium. Знание того, что Trichoderma действует через микопаразитизм, конкуренцию и антибиотики, позволяет эффективно применять его препараты для обработки семян и почвы. Beauveria bassiana (Ascomycota) — энтомопатоген, действующий на широкий спектр насекомых. Знание его биологии позволяет использовать его против колорадского жука, тли, белокрылки (Raven et al., 2013; Webster & Weber, 2007).

Пример 5: Микотоксины. Fusarium graminearum (Ascomycota) поражает пшеницу и продуцирует дезоксиниваленол (DON). Знание того, что DON накапливается при высокой влажности в период цветения и созревания, позволяет агроному спланировать уборку в оптимальные сроки и избежать загрязнения зерна. Знание того, что Aspergillus flavus продуцирует афлатоксины в кукурузе и арахисе при высокой температуре и влажности, позволяет применить сушку и правильное хранение (Agrios, 2005; Campos & Ortiz, 2020).

8.4. Перспективы: что нас ждёт в будущем

Микология — быстро развивающаяся наука. Новые методы исследования (метагеномика, секвенирование нового поколения, CRISPR-Cas9) открывают новые горизонты в изучении грибов. Что нас ждёт в ближайшие десятилетия?

1. Открытие новых видов. По оценкам, описано лишь 5–10% существующих видов грибов. Тропические леса, почвы, кишечники животных содержат миллионы неизвестных видов. Новые виды могут стать источником новых антибиотиков, ферментов, биоактивных соединений (Webster & Weber, 2007; Raven et al., 2013).

2. Генетическая инженерия грибов. Редактирование генома позволяет создавать штаммы с улучшенными свойствами: повышенной продукцией ферментов, устойчивостью к патогенам, способностью к биоремедиации. Генетически модифицированные микоризные грибы могут стать более эффективными симбионтами (Raven et al., 2013).

3. Новые биопрепараты. Разработка новых формуляций микоинсектицидов и микофунгицидов на основе энтомопатогенов (Beauveria, Metarhizium, Entomophthora) и антагонистов (Trichoderma, Gliocladium) позволит снизить зависимость от химических пестицидов (Raven et al., 2013).

4. Микоремедиация. Белые гнили (Trametes, Pleurotus, Phanerochaete) будут всё шире использоваться для очистки почв от нефтепродуктов, пестицидов, тяжёлых металлов (Raven et al., 2013).

5. Устойчивое земледелие. Интеграция микоризных препаратов, биоконтроля и устойчивых сортов позволит создать системы земледелия, которые будут производить достаточно продовольствия без ущерба для окружающей среды (Lambers & Oliveira, 2019).

Список источников

  1. Adolf, B., Andrade-Piedra, J., Molina, F.Bittara, Przetakiewicz, J., Hausladen, H., Kromann, P., Lees, A., Lindqvist-Kreuze, H., Perez, W., Secor, G.A. (2020). ‘Fungal, Oomycete, and Plasmodiophorid Diseases of Potato’, in The Potato Crop. Cham: Springer International Publishing, 307-350. doi: 10.1007/978-3-030-28683-5_9
  2. Agrios, G.N. (2005). ‘Plant Diseases Caused by Fungi’, in Plant Pathology. London, UK: ACADEMIC PRESS, pp. 385-615.
  3. Alexopoulos, C.J., Mims, C.W., Blackwell, M. (1996). ‘Deuteromycetes Asexual Ascomycetes and Other Asexual Fungi’, in Introductory Mycology. Canada: John Wiley & Sons, Inc., pp. 214-257.
  4. Alexopoulos, C.J., Mims, C.W., Blackwell, M. (1996). ‘Kingdom Fungi Introduction to Fungi and Their Significance to Humans’, in Introductory Mycology. Canada: John Wiley & Sons, Inc., pp. 1-25.
  5. Alexopoulos, C.J., Mims, C.W., Blackwell, M. (1996). ‘Phylum Ascomycota Filamentous Ascomycetes — Pyrenomycetes; Ascomycetes with Perithecia’, in Introductory Mycology. Canada: John Wiley & Sons, Inc., pp. 323-375.
  6. Alexopoulos, C.J., Mims, C.W., Blackwell, M. (1996). ‘Phylum Ascomycota Introduction to Ascomycetes’, in Introductory Mycology. Canada: John Wiley & Sons, Inc., pp. 180-213.
  7. Alexopoulos, C.J., Mims, C.W., Blackwell, M. (1996). ‘Phylum Chytridiomycota’, in Introductory Mycology. Canada: John Wiley & Sons, Inc., pp. 86-126.
  8. Alexopoulos, C.J., Mims, C.W., Blackwell, M. (1996). ‘Phylum Zygomycota Class Zygomycetes’, in Introductory Mycology. Canada: John Wiley & Sons, Inc., pp. 127-171.
  9. Evert, R.F., Eichhorn, S.E. (2013). ‘Fungi’, in Raven Biology of Plants. New York: W.H. Freeman, pp. 278-316.
  10. Lambers, H., Oliveira, R.S. (2019). ‘Biotic Influences: Symbiotic Associations’, in Plant Physiological Ecology. Cham: Springer International Publishing, 487-540. doi: 10.1007/978-3-030-29639-1_12
  11. Webster, J., Weber, R. (2007). ‘Ascomycota (ascomycetes)’, in Introduction to Fungi. Cambridge CB2 8RU, UK: Cambridge University Press, pp. 226-249.
  12. Webster, J., Weber, R. (2007). ‘Basidiomycota’, in Introduction to Fungi. Cambridge CB2 8RU, UK: Cambridge University Press, pp. 487-513.
  13. Webster, J., Weber, R. (2007). ‘Chytridiomycota’, in Introduction to Fungi. Cambridge CB2 8RU, UK: Cambridge University Press, pp. 127-164.
  14. Webster, J., Weber, R. (2007). ‘Introduction’, in Introduction to Fungi. Cambridge CB2 8RU, UK: Cambridge University Press, pp. 1-39.
  15. Webster, J., Weber, R. (2007). ‘Ustilaginomycetes: smut fungi and their allies’, in Introduction to Fungi. Cambridge CB2 8RU, UK: Cambridge University Press, pp. 636-657.
  16. Сокирко, В.П., Горьковенко, В.С. (2019). ‘Низшие грибы (настоящие) [Lower fungi (true)]’, in Фитопатогенные грибы: морфология и систематика [Phytopathogenic fungi: morphology and systematics]. Краснодар, Россия: Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина, pp. 57-60.
  17. Сокирко, В.П., Горьковенко, В.С. (2019). ‘Систематика и номенклатура грибов царства Mycota [Systematics and nomenclature of fungi of the kingdom Mycota]’, in Фитопатогенные грибы: морфология и систематика [Phytopathogenic fungi: morphology and systematics]. Краснодар, Россия: Кубанский государственный аграрный университет имени И. Т. Трубилина, pp. 26-32.